| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 缩略词简表 | 第12-19页 |
| 第一章 绪论 | 第19-46页 |
| 1.1 引言 | 第19页 |
| 1.2 天然关节 | 第19-23页 |
| 1.2.1 关节的整体结构与功能 | 第19-20页 |
| 1.2.2 关节润滑系统的工作机理 | 第20-22页 |
| 1.2.3 关节力学支撑系统的工作机理 | 第22-23页 |
| 1.3 骨关节炎的发生、病理研究与治疗现状 | 第23-34页 |
| 1.3.1 骨关节炎的发生 | 第23-25页 |
| 1.3.2 骨关节炎的病理研究 | 第25-32页 |
| 1.3.2.1 骨关节炎的进展性加重与关节功能的丧失 | 第25-27页 |
| 1.3.2.2 骨关节炎中细胞因子的分泌和细胞响应 | 第27-31页 |
| 1.3.2.3 骨关节炎模型的研究 | 第31-32页 |
| 1.3.3 骨关节炎治疗的现状、瓶颈与发展趋势 | 第32-34页 |
| 1.4 生物材料在OA治疗中的研究与发展 | 第34-43页 |
| 1.4.1 关节润滑材料和软骨表层修复材料用于关节润滑的研究现状 | 第34-37页 |
| 1.4.1.1 人工滑液的临床使用现状 | 第34-35页 |
| 1.4.1.2 合成仿生滑液材料的研究现状 | 第35-36页 |
| 1.4.1.3 软骨表层修复材料的相关研究 | 第36-37页 |
| 1.4.2 组织工程化水凝胶引导软骨再生用于OA治疗的研究现状 | 第37-41页 |
| 1.4.2.1 水凝胶支架用于软骨修复和OA治疗 | 第37-39页 |
| 1.4.2.2 种子细胞用于软骨修复和OA治疗的研究状况 | 第39-41页 |
| 1.4.2.3 抗炎水凝胶用于OA治疗的研究 | 第41页 |
| 1.4.3 软骨下骨及软骨全层修复材料的研究现状 | 第41-43页 |
| 1.4.3.1 软骨下骨修复材料的研究现状 | 第42页 |
| 1.4.3.2 骨软骨一体化修复材料的研究现状 | 第42-43页 |
| 1.5 论文的研究目的、意义及主要内容 | 第43-46页 |
| 第二章 体外3D骨关节炎模型的构建及其生物学特性研究 | 第46-87页 |
| 2.1 引言 | 第46-47页 |
| 2.2 材料与方法 | 第47-58页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第47-48页 |
| 2.2.2 实验设备 | 第48-49页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第49-58页 |
| 2.2.3.1 原代软骨细胞、病变滑膜细胞和巨噬细胞的取与培养 | 第49页 |
| 2.2.3.2 体外正常透明软骨模型的构建 | 第49-50页 |
| 2.2.3.3 体外巨噬免疫细胞的激活 | 第50页 |
| 2.2.3.4 体外骨关节炎模型的构建 | 第50-52页 |
| 2.2.3.5 扫电子显微镜测试 | 第52页 |
| 2.2.3.6 ELISA蛋白定量测试 | 第52-53页 |
| 2.2.3.7 qRT-PCR检测相关标志物的mRNA表达 | 第53-56页 |
| 2.2.3.8 软骨基质定量测试 | 第56页 |
| 2.2.3.9 组织学及免疫荧光染色检测 | 第56-57页 |
| 2.2.3.10 数据处理与分析 | 第57-58页 |
| 2.3 实验结果及讨论 | 第58-85页 |
| 2.3.1 体外3D炎症模型组分的选择和鉴定 | 第58-61页 |
| 2.3.2 体外3D骨关节炎模型的构建及炎症环境的鉴定 | 第61-64页 |
| 2.3.3 炎症模型中的软骨部分的组织学变化分析 | 第64-65页 |
| 2.3.4 炎症模型中炎症通路的激活与炎症相关因子表达情况分析 | 第65-69页 |
| 2.3.5 炎症模型中软骨基质合成代谢通路的相关变化分析 | 第69-76页 |
| 2.3.6 炎症模型中软骨基质分解代谢通路的相关变化分析 | 第76-81页 |
| 2.3.7 炎症模型中炎症、基质合成和分解代谢通路调控的综合分析 | 第81-85页 |
| 2.4 本章小结 | 第85-87页 |
| 第三章 聚电解质仿生关节滑液体系的构建、润滑性能及生物学性能的研究 | 第87-111页 |
| 3.1 引言 | 第87-89页 |
| 3.2 材料与方法 | 第89-95页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第89-90页 |
| 3.2.2 实验设备 | 第90页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第90-95页 |
| 3.2.3.1 仿生滑液体系HPA/HPM的制备、存储、灭菌与溶解 | 第90-91页 |
| 3.2.3.2 仿生滑液体系临界胶束浓度测试 | 第91页 |
| 3.2.3.3 原代软骨细胞和滑膜干细胞的取 | 第91页 |
| 3.2.3.4 仿生滑液体系细胞增殖毒性测试 | 第91-92页 |
| 3.2.3.5 仿生滑液体系润滑性能测试 | 第92-93页 |
| 3.2.3.6 体外透明软骨模型的构建及与仿生滑液体系的共培养 | 第93-94页 |
| 3.2.3.7 qRT-PCR检测相关基因的mRNA表达 | 第94页 |
| 2.2.3.8 GAG软骨基质定量分析 | 第94-95页 |
| 2.2.3.9 组织学及免疫荧光染色分析 | 第95页 |
| 3.2.3.10 数据处理与分析 | 第95页 |
| 3.3 实验结果及讨论 | 第95-109页 |
| 3.3.1 仿生滑液组分的临界胶束浓度分析 | 第95-96页 |
| 3.3.2 仿生滑液组分的细胞增殖毒性分析 | 第96-99页 |
| 3.3.3 仿生滑液体系工作浓度的确定 | 第99-100页 |
| 3.3.4 仿生滑液体系的润滑性能分析 | 第100-103页 |
| 3.3.5 仿生滑液体系对正常软骨模型的组织学及表型影响 | 第103-107页 |
| 3.3.6 仿生滑液体系对正常软骨模型中滑液分泌相关表型的影响 | 第107-108页 |
| 3.3.7 仿生滑液体系对滑膜系统的组织表型的影响 | 第108-109页 |
| 3.4 本章小结 | 第109-111页 |
| 第四章 仿生滑液体系在关节炎环境下的功能性保持及对炎症的生物学影响 | 第111-137页 |
| 4.1 引言 | 第111-112页 |
| 4.2 材料与方法 | 第112-118页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第112-113页 |
| 4.2.2 实验设备 | 第113页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第113-118页 |
| 4.2.3.1 体外骨关节炎模型的构建及与仿生滑液体系的共培养 | 第113-115页 |
| 4.2.3.2 仿生滑液体系在炎症环境下的流变学性能测试 | 第115页 |
| 4.2.3.3 仿生滑液体系在炎症环境下的润滑性能测试 | 第115页 |
| 4.2.3.4 qRT-PCR检测相关基因在mRNA水平上的表达 | 第115-117页 |
| 4.2.3.5 软骨基质变化定量检测 | 第117页 |
| 4.2.3.6 组织学及免疫荧光染色测试 | 第117页 |
| 4.2.3.7 酶联免疫吸附ELISA蛋白定量测试 | 第117-118页 |
| 4.2.3.8 数据处理与分析 | 第118页 |
| 4.3 实验结果及讨论 | 第118-135页 |
| 4.3.1 仿生滑液体系在炎症环境下的流变学性能变化分析 | 第118-121页 |
| 4.3.2 仿生滑液体系在炎症环境下的润滑性能变化分析 | 第121-123页 |
| 4.3.3 仿生滑液体系对OA模型中炎症通路及炎症微环境的影响 | 第123-126页 |
| 4.3.4 仿生滑液体系对OA模型中软骨组织学和基质积累的影响 | 第126-128页 |
| 4.3.5 仿生滑液体系对OA模型中软骨基质合成/分解代谢平衡的影响 | 第128-135页 |
| 4.4 本章小结 | 第135-137页 |
| 第五章 氨基葡萄糖改性水凝胶的构建及其介导BMSCS向软骨分化的研究 | 第137-164页 |
| 5.1 引言 | 第137-138页 |
| 5.2 材料与方法 | 第138-145页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第138-139页 |
| 5.2.2 实验设备 | 第139-140页 |
| 5.2.3 实验方法 | 第140-145页 |
| 5.2.3.1 N-丙烯酰氨基葡萄糖的制备及表征 | 第140页 |
| 5.2.3.2 氨基葡萄糖改性聚乙二醇水凝胶的构建 | 第140页 |
| 5.2.3.3 骨髓间充质干细胞和成软骨细胞系ATDC5的培养 | 第140-141页 |
| 5.2.3.4 N-丙烯酰胺基葡萄糖的细胞毒性检测及诱导ATDC5软骨分化 | 第141页 |
| 5.2.3.5 氨基葡萄糖改性水凝胶内细胞增殖分析及诱导软骨分化 | 第141-142页 |
| 5.2.3.6 氨基葡萄糖改性水凝胶的力学性能分析 | 第142页 |
| 5.2.3.7 qRT-PCR检测相关mRNA表达 | 第142-144页 |
| 5.2.3.8 软骨基质定量测试 | 第144页 |
| 5.2.3.9 组织学及免疫组织化学染色测试 | 第144页 |
| 5.2.3.10 改性氨糖水凝胶小鼠皮下培植实验 | 第144-145页 |
| 5.2.3.11 数据处理与分析 | 第145页 |
| 5.3 实验结果及讨论 | 第145-163页 |
| 5.3.1 N-丙烯酰胺基葡萄糖的结构与细胞相容性 | 第145-148页 |
| 5.3.2 N-丙烯酰胺基葡萄糖对软骨分化的作用分析 | 第148-150页 |
| 5.3.3 氨基葡萄糖改性PEG水凝胶的结构与组分表征 | 第150-152页 |
| 5.3.4 氨基葡萄糖改性PEG水凝胶对细胞增殖的影响 | 第152-154页 |
| 5.3.5 氨基葡萄糖改性PEG水凝胶介导hBMSCs向软骨分化分析 | 第154-158页 |
| 5.3.6 氨基葡萄糖改性水凝胶对软骨分化中基质异化和炎症的影响 | 第158-161页 |
| 5.3.7 氨基葡萄糖改性PEG水凝胶小鼠皮下异位成软骨分析 | 第161-163页 |
| 5.4 本章小结 | 第163-164页 |
| 第六章 β-TCP/PVA双层一体化凝胶用于软骨全层修复的研究 | 第164-179页 |
| 6.1 引言 | 第164-165页 |
| 6.2 材料与方法 | 第165-169页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第165-166页 |
| 6.2.2 实验设备 | 第166页 |
| 6.2.3 实验方法 | 第166-169页 |
| 6.2.3.1 β-TCP/PVA双层一体化水凝胶的制备 | 第166-167页 |
| 6.2.3.2 一体化水凝胶的润滑性能分析 | 第167页 |
| 6.2.3.3 一体化水凝胶上层软骨细胞贴附性能表征 | 第167页 |
| 6.2.3.4 一体化水凝胶下层诱导间充质干细胞成骨分化 | 第167页 |
| 6.2.3.5 qRT-PCR检测相关mRNA表达 | 第167-168页 |
| 6.2.3.6 钙沉积定量分析 | 第168-169页 |
| 6.2.3.7 组织学及免疫组织化学分析 | 第169页 |
| 6.2.3.8 数据处理与分析 | 第169页 |
| 6.3 实验结果及讨论 | 第169-177页 |
| 6.3.1 β-TCP/PVA双层一体化水凝胶的组分与结构分析 | 第169-171页 |
| 6.3.2 β-TCP/PVA一体化水凝胶上层润滑性能分析 | 第171-172页 |
| 6.3.3 β-TCP/PVA一体化水凝胶对软骨细胞贴附的影响 | 第172-175页 |
| 6.3.4 β-TCP/PVA一体化水凝胶下层对间充质干细胞成骨分化的影响 | 第175-177页 |
| 6.4 本章小结 | 第177-179页 |
| 结论 | 第179-181页 |
| 展望 | 第181-182页 |
| 论文创新性 | 第182-183页 |
| 参考文献 | 第183-202页 |
| 攻读博士期间取得的研究成果 | 第202-206页 |
| 致谢 | 第206-207页 |
| 附录 | 第207页 |
