| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 英汉对照缩略词表 | 第8-10页 |
| 前言 | 第10-13页 |
| 实验研究 | 第13-43页 |
| 1 材料和方法 | 第13-17页 |
| 1.1 肝癌细胞和microRNA来源 | 第13页 |
| 1.2 实验耗材及主要试剂 | 第13-14页 |
| 1.3 主要实验仪器及设备 | 第14-15页 |
| 1.4 主要试剂和药物的配制 | 第15-17页 |
| 2 研究方法 | 第17-29页 |
| 2.1 技术路线图 | 第17页 |
| 2.2 细胞培养及转染 | 第17-20页 |
| 2.3 细胞划痕愈合实验检测转染miR-183inhibitor处理后HepG2细胞横向迁移能力 | 第20页 |
| 2.4 Transwell迁移实验检测转染miR-183inhibitor处理后HepG2细胞纵向迁移能力 | 第20-21页 |
| 2.5 Transwell侵袭实验检测转染miR-183inhibitor处理后HepG2细胞侵袭能力 | 第21页 |
| 2.6 MTT检测转染miR-183inhibitor处理后对HepG2细胞增殖的影响 | 第21-22页 |
| 2.7 流式细胞仪检测转染miR-183inhibitor处理后对HepG2细胞凋亡的影响 | 第22页 |
| 2.8 实时荧光定量PCR法检测转染miR-183inhibitor后miR-183、EGR-1和PTK6基因的表达 | 第22-26页 |
| 2.9 Westernblot检测转染处理后HepG2细胞中EGR-1、PTK6蛋白的表达 | 第26-29页 |
| 2.10 生物信息学预测 | 第29页 |
| 2.11 统计方法 | 第29页 |
| 3 实验结果 | 第29-38页 |
| 3.1 转染荧光图 | 第29-30页 |
| 3.2 实时荧光定量PCR检测转染后miR-183含量的变化 | 第30-31页 |
| 3.3 MTT检测各组HepG2细胞增殖率 | 第31-32页 |
| 3.4 流式细胞仪检测各组HepG2细胞凋亡率 | 第32-33页 |
| 3.5 划痕愈合检测各组HepG2细胞横向迁移能力 | 第33页 |
| 3.6 Transwell检测各组HepG2细胞纵向迁移能力和侵袭能力 | 第33-35页 |
| 3.7 各组HepG2细胞的总RNA的电泳 | 第35页 |
| 3.8 转染处理HepG2细胞后EGR-1、PTK6基因的表达 | 第35-36页 |
| 3.9 转染处理HepG2细胞后EGR-1和PTK6的蛋白的表达量 | 第36-37页 |
| 3.10 生物信息学预测miR-183与EGR-1的靶向关系结果 | 第37-38页 |
| 4 讨论 | 第38-43页 |
| 4.1 miR-183对HepG2细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭能力的影响 | 第39-41页 |
| 4.2 miR-183在HepG2细胞中的改变与EGR-1的关系 | 第41-42页 |
| 4.3 miR-183在HepG2细胞中的改变与PTK6的关系 | 第42-43页 |
| 结语 | 第43-45页 |
| 1.研究结论 | 第43-44页 |
| 2.研究结果的意义 | 第44页 |
| 3.问题与展望 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-53页 |
| 文献综述 | 第53-73页 |
| 参考文献 | 第62-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 获奖情况及科研成果 | 第75页 |
