| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 英文缩略语中英对照 | 第9-12页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-25页 |
| 1. PTD-FNK蛋白概述 | 第14-18页 |
| 1.1 Bcl-xL蛋白 | 第14页 |
| 1.2 Bcl-xL蛋白在细胞上的功能 | 第14-15页 |
| 1.3 PTD-FNK蛋白的发现 | 第15-16页 |
| 1.4 PTD-FNK蛋白细胞保护作用的机理 | 第16页 |
| 1.5 PTD-FNK蛋白的应用概况 | 第16-18页 |
| 2. 细胞凋亡概述 | 第18-22页 |
| 2.1 细胞凋亡过程中的形态变化 | 第19页 |
| 2.2 细胞凋亡的分子机制 | 第19-21页 |
| 2.2.1 半胱氨酸蛋白酶的介绍 | 第19-20页 |
| 2.2.2 半胱氨酸蛋白酶的活性位点 | 第20-21页 |
| 2.3 细胞凋亡的三大经典途径 | 第21-22页 |
| 2.3.1 细胞的线粒体凋亡途径 | 第21页 |
| 2.3.2 细胞的外部死亡受体介导的凋亡途径 | 第21-22页 |
| 2.3.3 B粒酶信号介导的凋亡途径 | 第22页 |
| 3. 睾丸间质细胞在睾丸发育过程中的作用及其凋亡的研究意义 | 第22-24页 |
| 3.1 睾丸间质细胞在睾丸发育过程中的作用 | 第22-23页 |
| 3.2 TM3的凋亡及其研究意义 | 第23-24页 |
| 4. 二甲磺基乙烷简介 | 第24页 |
| 5. 试验研究的目的及意义 | 第24-25页 |
| 第二章 PTD-FNK蛋白对EDS诱导凋亡的TM3活力的影响 | 第25-38页 |
| 1. 材料和方法 | 第25-31页 |
| 1.1 材料 | 第25-26页 |
| 1.1.1 TM3细胞系 | 第25页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第25-26页 |
| 1.1.3 主要仪器设备 | 第26页 |
| 1.1.4 主要溶液配制 | 第26页 |
| 1.2 方法 | 第26-31页 |
| 1.2.1 TM3的培养与处理 | 第26-28页 |
| 1.2.2 TM3的免疫荧光鉴定 | 第28-29页 |
| 1.2.3 PTD-FNK蛋白作用下EDS诱导的TM3活力分析 | 第29-30页 |
| 1.2.4 PTD-FNK蛋白作用下EDS诱导的TM3凋亡与坏死的检测 | 第30-31页 |
| 2. 结果 | 第31-35页 |
| 2.1 TM3的荧光免疫纯度 | 第31-32页 |
| 2.2 TM3最佳接种密度和最佳测定时间 | 第32页 |
| 2.3 TM3的活力 | 第32-33页 |
| 2.4 TM3的凋亡与坏死 | 第33-35页 |
| 3. 讨论 | 第35-37页 |
| 4. 小结 | 第37-38页 |
| 第三章 PTD-FNK蛋白对EDS诱导的TM3凋亡相关酶类活性的影响 | 第38-45页 |
| 1. 材料和方法 | 第38-42页 |
| 1.1 材料 | 第38页 |
| 1.1.1 主要试剂 | 第38页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第38页 |
| 1.2 方法 | 第38-42页 |
| 1.2.1 TM3的培养与处理 | 第38-39页 |
| 1.2.2 分光光度法检测TM3的Caspase-3、Caspase-9的活性 | 第39-42页 |
| 2. 结果 | 第42-43页 |
| 2.1 PTD-FNK蛋白对EDS诱导的TM3 Caspase-3活性的影响 | 第42-43页 |
| 2.2 PTD-FNK蛋白对EDS诱导的TM3 Caspase-9活性的影响 | 第43页 |
| 3. 讨论 | 第43-44页 |
| 4. 小结 | 第44-45页 |
| 全文总结 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
