摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
英文缩略语 | 第8-12页 |
1 前言 | 第12-13页 |
2 材料和方法 | 第13-25页 |
2.1 材料与试剂 | 第13-16页 |
2.1.1 细胞株 | 第13页 |
2.1.2 质粒 | 第13页 |
2.1.3 组织来源 | 第13页 |
2.1.4 PCR引物 | 第13-14页 |
2.1.5 主要试剂 | 第14-15页 |
2.1.6 主要试剂配制方法 | 第15页 |
2.1.7 主要使用仪器 | 第15-16页 |
2.2 实验方法 | 第16-25页 |
2.2.1 Quantitative Real-time PCR检验非小细胞肺癌中Sparcl1 mRNA在组织中表达水平 | 第16-18页 |
2.2.2 用Western blot验证Sparcl1蛋白在组织中的表达 | 第18-19页 |
2.2.3 用免疫组化检测Sparcl1在非小细胞肺癌组织及其相应癌旁肺组织中的表达 | 第19-20页 |
2.2.4 质粒提取 | 第20-21页 |
2.2.5 Lipofectamine3000介导细胞转染 | 第21页 |
2.2.6 用Quantitative Real-time PCR检测过表达Sparcl1转染入A549细胞中的转染效率 | 第21-23页 |
2.2.7 用Western blot检测转染效率 | 第23页 |
2.2.8 细胞划痕实验 | 第23页 |
2.2.9 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第23-24页 |
2.2.10 流式细胞仪检测细胞周期 | 第24页 |
2.2.11 统计分析 | 第24-25页 |
3 结果 | 第25-34页 |
3.1 Quantitative Real-time PCR结果 | 第25页 |
3.2 Western blot结果 | 第25-26页 |
3.3 免疫组化结果 | 第26-27页 |
3.4 Sparcl1蛋白的表达强度与非小细胞肺癌的临床关系 | 第27-28页 |
3.5 Sparcl1蛋白的表达与非小细胞肺癌生产率的关系 | 第28-29页 |
3.6 过表达Sparcl1 RNA转染结果 | 第29页 |
3.7 Quantitative Real-time PCR检测转染结果 | 第29-30页 |
3.8 Western bolt检测过表达Sparcl1蛋白的表达水平 | 第30-31页 |
3.9 细胞划痕实验 | 第31-32页 |
3.10 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第32页 |
3.11 流式细胞仪检测细胞周期 | 第32-34页 |
4 讨论 | 第34-36页 |
5 结论 | 第36-37页 |
本研究创新性的自我评价 | 第37-38页 |
参考文献 | 第38-40页 |
综述 | 第40-47页 |
参考文献 | 第44-47页 |
致谢 | 第47-48页 |
个人简历 | 第48页 |