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茶叶中多糖及多酚类成分的理化性质及活性研究

摘要第4-5页
abstract第5页
第1章 茶多糖及茶多酚的研究进展第10-22页
    1.1 茶多糖的研究进展第10-17页
        1.1.1 茶多糖的种类第10-11页
        1.1.2 茶多糖缀合物第11-12页
        1.1.3 茶多糖的提取纯化方法第12-13页
        1.1.4 茶多糖的生物活性第13-17页
            1.1.4.1 抗氧化作用第13页
            1.1.4.2 降血糖作用第13-14页
            1.1.4.3 降血脂及抗凝血作用第14-15页
            1.1.4.4 免疫作用第15页
            1.1.4.5 抗肿瘤及抗癌作用第15-16页
            1.1.4.6 抗病毒作用第16页
            1.1.4.7 对肝脏和皮肤的保护作用第16页
            1.1.4.8 毒性第16-17页
    1.2 茶多酚的研究进展第17-20页
        1.2.1 茶多酚的种类第17页
        1.2.2 茶多酚的提取方法第17页
        1.2.3 茶多酚的生物活性第17-20页
            1.2.3.1 茶多酚的抗氧化作用第18页
            1.2.3.2 茶多酚的抗癌作用第18-19页
            1.2.3.3 茶多酚的降压作用及对心血管的保护作用第19-20页
    1.3 课题意义第20-22页
第2章 茶多糖的理化性质及与茶多酚的协同作用研究第22-38页
    2.1 引言第22-23页
    2.2 实验材料与仪器第23-25页
        2.2.1 实验材料第23页
        2.2.2 实验试剂第23-24页
        2.2.3 实验仪器第24-25页
    2.3 实验方法第25-28页
        2.3.1 茶多糖TPS和茶多酚TP的制备第25页
        2.3.2 乌龙茶多糖超滤分级第25页
        2.3.3 多糖组成分析第25-26页
        2.3.4 单糖组成分析第26页
        2.3.5 多糖粘度测定第26页
        2.3.6 红外光谱分析第26页
        2.3.7 扫描电镜分析第26页
        2.3.8 绿茶、乌龙茶、红茶多糖和多酚的抗氧化活性第26-27页
        2.3.9 绿茶、乌龙茶、红茶多糖和多酚在体外对肝癌SMMC7721,卵巢癌SKOV3和宫颈癌HeLa细胞的生长抑制作用第27页
        2.3.10 乌龙茶多糖各组分和乌龙茶多酚在体外对肝癌SMMC7721细胞的生长抑制作用第27页
        2.3.11 协同指数(CI)及减量指数(DRI)计算第27-28页
    2.4 结果与分析第28-36页
        2.4.1 乌龙茶多糖各组分的含量及单糖组成第28-29页
        2.4.2 乌龙茶多糖各组分的粘度分析第29页
        2.4.3 乌龙茶多糖各组分的红外光谱分析第29-30页
        2.4.4 乌龙茶多糖各组分的扫描电镜分析第30-31页
        2.4.5 绿茶、乌龙茶、红茶多糖和多酚的抗氧化活性第31页
        2.4.6 绿茶、乌龙茶、红茶多糖和多酚对肝癌SMMC7721,卵巢癌SKOV3和宫颈癌HeLa细胞的抑制作用第31-34页
        2.4.7 不同分子量乌龙茶多糖与乌龙茶多酚在体外对肝癌SMMC7721细胞的生长抑制作用第34-36页
    2.5 结论第36-38页
第3章 乌龙茶多糖OTPS1与多酚的体内协同抗肝癌作用研究第38-48页
    3.1 引言第38页
    3.2 实验材料与仪器第38-39页
        3.2.1 实验材料第38页
        3.2.2 实验试剂第38-39页
        3.2.3 实验仪器第39页
    3.3 实验方法第39-40页
        3.3.1 乌龙茶多糖和乌龙茶多酚的制备第39页
        3.3.2 实验动物第39页
        3.3.3 H22荷瘤小鼠模型的复制和实验动物分组第39页
        3.3.4 OTPS1和OTP对荷瘤小鼠的肿瘤生长,免疫器官指数及水食效率的影响第39-40页
        3.3.5 肝脏中酶活力的测定第40页
        3.3.6 血清中细胞因子的测定第40页
        3.3.7 肿瘤组织病理学分析第40页
    3.4 结果与分析第40-46页
        3.4.1 OTPS1和OTP在肿瘤生长、免疫器官指数,水食效率等方面发挥的作用第40-42页
        3.4.2 肝脏中GSH-Px,CAT,SOD,ALT和AST的活力以及MDA的含量第42-44页
        3.4.3 OTPS1和OTP对细胞因子水平的影响第44-45页
        3.4.4 肿瘤组织病理学分析第45-46页
    3.5 结论第46-48页
第4章 茶叶废弃物中的黄酮醇及其活性研究第48-62页
    4.1 引言第48-49页
    4.2 实验材料与仪器第49-50页
        4.2.1 实验材料第49页
        4.2.2 实验试剂第49页
        4.2.3 实验仪器第49-50页
    4.3 实验方法第50-51页
        4.3.1 绿茶,乌龙茶,红茶黄酮醇(GTF,OTF,BTF)的制备第50页
        4.3.2 高效液相色谱-质谱联用法分析GTF,OTF和BTF第50页
        4.3.3 GTF,OTF和BTF的生物活性探究第50-51页
            4.3.3.1 GTF,OTF和BTF的抗氧化活性第50-51页
            4.3.3.2 GTF,OTF和BTF对血管紧张素转化酶(ACE)的抑制作用第51页
            4.3.3.3 GTF,OTF和BTF的体内抗高血压活性第51页
            4.3.3.4 GTF,OTF和BTF对SKOV3细胞,HeLa 细胞和SMMC7721细胞的生长抑制作用第51页
    4.4 结果与分析第51-59页
        4.4.1 GTF,OTF,BTF的成分鉴定第51-54页
        4.4.2 GTF,OTF,BTF的抗氧化活性第54页
        4.4.3 GTF,OTF,BTF对ACE的抑制作用第54-55页
        4.4.4 GTF,OTF,BTF对自发性高血压大鼠(SHRs)收缩压和舒张压的影响第55-57页
        4.4.5 GTF,OTF,BTF的抗癌活性第57-58页
        4.4.6 皮尔森相关性分析和主成分分析第58-59页
    4.5 结论第59-62页
第5章 大孔树脂法分离制备红茶花青素第62-74页
    5.1 引言第62页
    5.2 实验材料与仪器第62-63页
        5.2.1 实验材料第62-63页
        5.2.2 实验试剂第63页
        5.2.3 实验仪器第63页
    5.3 实验方法第63-66页
        5.3.1 大孔树脂预处理第63页
        5.3.2 红茶花青素粗品的制备第63页
        5.3.3 红茶花青素的含量测定第63-64页
        5.3.4 静态吸附与解吸实验第64-65页
            5.3.4.1 树脂的静态吸附与解吸性能第64页
            5.3.4.2 树脂的吸附动力学实验第64-65页
            5.3.4.3 树脂的吸附等温实验第65页
            5.3.4.4 树脂的吸附热力学实验第65页
        5.3.5 动态吸附与解吸实验第65-66页
            5.3.5.1 NKA-9分离纯化BTA第65-66页
            5.3.5.2 计算BTA的回收率第66页
    5.4 结果与分析第66-72页
        5.4.1 不同树脂的静态吸附与解吸能力第66-67页
        5.4.2 ADS-8和NKA-9两种树脂对BTA的吸附动力学过程第67-68页
        5.4.3 ADS-8和NKA-9两种树脂对BTA的等温吸附过程第68-70页
        5.4.4 ADS-8和NKA-9两种树脂对BTA的吸附热力学过程第70-71页
        5.4.5 NKA-9树脂分离纯化BTA第71-72页
    5.5 结论第72-74页
第6章 结论与展望第74-76页
参考文献第76-92页
发表论文和参加科研情况说明第92-94页
致谢第94-95页

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