摘要 | 第4-5页 |
abstract | 第5页 |
第1章 茶多糖及茶多酚的研究进展 | 第10-22页 |
1.1 茶多糖的研究进展 | 第10-17页 |
1.1.1 茶多糖的种类 | 第10-11页 |
1.1.2 茶多糖缀合物 | 第11-12页 |
1.1.3 茶多糖的提取纯化方法 | 第12-13页 |
1.1.4 茶多糖的生物活性 | 第13-17页 |
1.1.4.1 抗氧化作用 | 第13页 |
1.1.4.2 降血糖作用 | 第13-14页 |
1.1.4.3 降血脂及抗凝血作用 | 第14-15页 |
1.1.4.4 免疫作用 | 第15页 |
1.1.4.5 抗肿瘤及抗癌作用 | 第15-16页 |
1.1.4.6 抗病毒作用 | 第16页 |
1.1.4.7 对肝脏和皮肤的保护作用 | 第16页 |
1.1.4.8 毒性 | 第16-17页 |
1.2 茶多酚的研究进展 | 第17-20页 |
1.2.1 茶多酚的种类 | 第17页 |
1.2.2 茶多酚的提取方法 | 第17页 |
1.2.3 茶多酚的生物活性 | 第17-20页 |
1.2.3.1 茶多酚的抗氧化作用 | 第18页 |
1.2.3.2 茶多酚的抗癌作用 | 第18-19页 |
1.2.3.3 茶多酚的降压作用及对心血管的保护作用 | 第19-20页 |
1.3 课题意义 | 第20-22页 |
第2章 茶多糖的理化性质及与茶多酚的协同作用研究 | 第22-38页 |
2.1 引言 | 第22-23页 |
2.2 实验材料与仪器 | 第23-25页 |
2.2.1 实验材料 | 第23页 |
2.2.2 实验试剂 | 第23-24页 |
2.2.3 实验仪器 | 第24-25页 |
2.3 实验方法 | 第25-28页 |
2.3.1 茶多糖TPS和茶多酚TP的制备 | 第25页 |
2.3.2 乌龙茶多糖超滤分级 | 第25页 |
2.3.3 多糖组成分析 | 第25-26页 |
2.3.4 单糖组成分析 | 第26页 |
2.3.5 多糖粘度测定 | 第26页 |
2.3.6 红外光谱分析 | 第26页 |
2.3.7 扫描电镜分析 | 第26页 |
2.3.8 绿茶、乌龙茶、红茶多糖和多酚的抗氧化活性 | 第26-27页 |
2.3.9 绿茶、乌龙茶、红茶多糖和多酚在体外对肝癌SMMC7721,卵巢癌SKOV3和宫颈癌HeLa细胞的生长抑制作用 | 第27页 |
2.3.10 乌龙茶多糖各组分和乌龙茶多酚在体外对肝癌SMMC7721细胞的生长抑制作用 | 第27页 |
2.3.11 协同指数(CI)及减量指数(DRI)计算 | 第27-28页 |
2.4 结果与分析 | 第28-36页 |
2.4.1 乌龙茶多糖各组分的含量及单糖组成 | 第28-29页 |
2.4.2 乌龙茶多糖各组分的粘度分析 | 第29页 |
2.4.3 乌龙茶多糖各组分的红外光谱分析 | 第29-30页 |
2.4.4 乌龙茶多糖各组分的扫描电镜分析 | 第30-31页 |
2.4.5 绿茶、乌龙茶、红茶多糖和多酚的抗氧化活性 | 第31页 |
2.4.6 绿茶、乌龙茶、红茶多糖和多酚对肝癌SMMC7721,卵巢癌SKOV3和宫颈癌HeLa细胞的抑制作用 | 第31-34页 |
2.4.7 不同分子量乌龙茶多糖与乌龙茶多酚在体外对肝癌SMMC7721细胞的生长抑制作用 | 第34-36页 |
2.5 结论 | 第36-38页 |
第3章 乌龙茶多糖OTPS1与多酚的体内协同抗肝癌作用研究 | 第38-48页 |
3.1 引言 | 第38页 |
3.2 实验材料与仪器 | 第38-39页 |
3.2.1 实验材料 | 第38页 |
3.2.2 实验试剂 | 第38-39页 |
3.2.3 实验仪器 | 第39页 |
3.3 实验方法 | 第39-40页 |
3.3.1 乌龙茶多糖和乌龙茶多酚的制备 | 第39页 |
3.3.2 实验动物 | 第39页 |
3.3.3 H22荷瘤小鼠模型的复制和实验动物分组 | 第39页 |
3.3.4 OTPS1和OTP对荷瘤小鼠的肿瘤生长,免疫器官指数及水食效率的影响 | 第39-40页 |
3.3.5 肝脏中酶活力的测定 | 第40页 |
3.3.6 血清中细胞因子的测定 | 第40页 |
3.3.7 肿瘤组织病理学分析 | 第40页 |
3.4 结果与分析 | 第40-46页 |
3.4.1 OTPS1和OTP在肿瘤生长、免疫器官指数,水食效率等方面发挥的作用 | 第40-42页 |
3.4.2 肝脏中GSH-Px,CAT,SOD,ALT和AST的活力以及MDA的含量 | 第42-44页 |
3.4.3 OTPS1和OTP对细胞因子水平的影响 | 第44-45页 |
3.4.4 肿瘤组织病理学分析 | 第45-46页 |
3.5 结论 | 第46-48页 |
第4章 茶叶废弃物中的黄酮醇及其活性研究 | 第48-62页 |
4.1 引言 | 第48-49页 |
4.2 实验材料与仪器 | 第49-50页 |
4.2.1 实验材料 | 第49页 |
4.2.2 实验试剂 | 第49页 |
4.2.3 实验仪器 | 第49-50页 |
4.3 实验方法 | 第50-51页 |
4.3.1 绿茶,乌龙茶,红茶黄酮醇(GTF,OTF,BTF)的制备 | 第50页 |
4.3.2 高效液相色谱-质谱联用法分析GTF,OTF和BTF | 第50页 |
4.3.3 GTF,OTF和BTF的生物活性探究 | 第50-51页 |
4.3.3.1 GTF,OTF和BTF的抗氧化活性 | 第50-51页 |
4.3.3.2 GTF,OTF和BTF对血管紧张素转化酶(ACE)的抑制作用 | 第51页 |
4.3.3.3 GTF,OTF和BTF的体内抗高血压活性 | 第51页 |
4.3.3.4 GTF,OTF和BTF对SKOV3细胞,HeLa 细胞和SMMC7721细胞的生长抑制作用 | 第51页 |
4.4 结果与分析 | 第51-59页 |
4.4.1 GTF,OTF,BTF的成分鉴定 | 第51-54页 |
4.4.2 GTF,OTF,BTF的抗氧化活性 | 第54页 |
4.4.3 GTF,OTF,BTF对ACE的抑制作用 | 第54-55页 |
4.4.4 GTF,OTF,BTF对自发性高血压大鼠(SHRs)收缩压和舒张压的影响 | 第55-57页 |
4.4.5 GTF,OTF,BTF的抗癌活性 | 第57-58页 |
4.4.6 皮尔森相关性分析和主成分分析 | 第58-59页 |
4.5 结论 | 第59-62页 |
第5章 大孔树脂法分离制备红茶花青素 | 第62-74页 |
5.1 引言 | 第62页 |
5.2 实验材料与仪器 | 第62-63页 |
5.2.1 实验材料 | 第62-63页 |
5.2.2 实验试剂 | 第63页 |
5.2.3 实验仪器 | 第63页 |
5.3 实验方法 | 第63-66页 |
5.3.1 大孔树脂预处理 | 第63页 |
5.3.2 红茶花青素粗品的制备 | 第63页 |
5.3.3 红茶花青素的含量测定 | 第63-64页 |
5.3.4 静态吸附与解吸实验 | 第64-65页 |
5.3.4.1 树脂的静态吸附与解吸性能 | 第64页 |
5.3.4.2 树脂的吸附动力学实验 | 第64-65页 |
5.3.4.3 树脂的吸附等温实验 | 第65页 |
5.3.4.4 树脂的吸附热力学实验 | 第65页 |
5.3.5 动态吸附与解吸实验 | 第65-66页 |
5.3.5.1 NKA-9分离纯化BTA | 第65-66页 |
5.3.5.2 计算BTA的回收率 | 第66页 |
5.4 结果与分析 | 第66-72页 |
5.4.1 不同树脂的静态吸附与解吸能力 | 第66-67页 |
5.4.2 ADS-8和NKA-9两种树脂对BTA的吸附动力学过程 | 第67-68页 |
5.4.3 ADS-8和NKA-9两种树脂对BTA的等温吸附过程 | 第68-70页 |
5.4.4 ADS-8和NKA-9两种树脂对BTA的吸附热力学过程 | 第70-71页 |
5.4.5 NKA-9树脂分离纯化BTA | 第71-72页 |
5.5 结论 | 第72-74页 |
第6章 结论与展望 | 第74-76页 |
参考文献 | 第76-92页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第92-94页 |
致谢 | 第94-95页 |