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利用功能宏基因组技术对北极、大西洋海底沉积物中的新型蛋白酶、酯酶进行筛选、鉴定和性质研究

目录第4-7页
中文摘要第7-9页
Abstract第9-11页
符号说明及缩略词第12-13页
第一章 研究背景和立题依据第13-27页
    1.1 研究背景第13-24页
        1.1.1 蛋白酶的概述第13-15页
            1.1.1.1 金属蛋白酶第13-14页
            1.1.1.2 Thermolysin家族金属蛋白酶第14页
            1.1.1.3 Thermolysin家族金属蛋白酶的成熟机制第14页
            1.1.1.4 Thermolysin家族金属蛋白酶的催化机制第14-15页
        1.1.2 酯类水解酶概述第15-18页
            1.1.2.1 酯类水解酶的催化机制第16-17页
            1.1.2.2 酯酶/脂肪酶的分泌机制第17-18页
            1.1.2.3 酯酶/脂肪酶的应用第18页
        1.1.3 宏基因组学第18-21页
            1.1.3.1 宏基因组学(Metagenome)的产生与定义第18-19页
            1.1.3.2 宏基因组学的常用研究技术第19-20页
            1.1.3.3 宏基因组学的用途第20-21页
        1.1.4 功能宏基因组在研究在蛋白酶、酯酶/脂肪酶方面的研究进展第21-22页
        1.1.5 采样位点信息介绍第22-24页
            1.1.5.1 北极黄河站王湾生态环境第22-23页
            1.1.5.2 大西洋TVG 5/7位点信息第23-24页
            1.1.5.3 海洋沉积物概述第24页
    1.2 立题依据和研究内容第24-27页
        1.2.1 立题依据第24-26页
        1.2.2 研究内容第26-27页
第二章 通过构建宏基因组文库筛选北极、大西洋海底沉积物中的蛋白酶、酯类水解酶基因第27-42页
    2.1 引言第27页
    2.2 实验材料第27-29页
        2.2.1 环境样品及实验菌株第27-28页
        2.2.2 培养基第28页
        2.2.3 主要试剂和试剂盒第28-29页
        2.2.4 主要仪器设备第29页
        2.2.5 数据库和分析软件第29页
    2.3 实验方法第29-34页
        2.3.1 环境样品的采集第29-30页
        2.3.2 环境样品基因组DNA提取第30页
        2.3.3 环境样品基因组DNA的纯化第30-31页
        2.3.4 宏基因组文库的构建第31-32页
            2.3.4.1 末端补平第31页
            2.3.4.2 连接反应第31-32页
            2.3.4.3 受体细胞的制备第32页
            2.3.4.4 包装、转染反应第32页
        2.3.5 宏基因组文库的功能筛选和克隆子纯化第32-33页
        2.3.6 亚克隆文库的构建以及活性筛选第33-34页
            2.3.6.1 EPI300电转感受态的制备第33页
            2.3.6.2 亚克隆重组载体的制备第33页
            2.3.6.3 电转反应第33-34页
            2.3.6.4 活性筛选第34页
        2.3.7 蛋白酶基因的获取和序列分析第34页
    2.4 结果与分析第34-40页
        2.4.1 北极海底沉积物宏基因组文库的构建第34-35页
        2.4.2 大西洋深海表层沉积物fosmid宏基因组文库的构建第35-36页
        2.4.3 Fosmid宏基因组的活性筛选及克隆子纯化第36-38页
            2.4.3.1 北极沉积物样品fosmid宏基因组文库的活性筛选以及阳性克隆的纯化第36-37页
            2.4.3.2 大西洋深海沉积物样品fosmid宏基因组文库TVG5/7的活性筛选以及阳性克隆的纯化第37-38页
        2.4.4 通过构建亚克隆文库确定编码蛋白酶的基因序列第38-39页
        2.4.5 编码蛋白酶基因的序列分析第39-40页
    2.5 讨论第40-42页
第三章 蛋白酶的异源表达及其酶学性质研究第42-63页
    3.1 引言第42页
    3.2 实验材料第42-44页
        3.2.1 环境样品及实验菌株第42页
        3.2.2 培养基第42页
        3.2.3 主要试剂和试剂盒第42-43页
        3.2.4 主要仪器设备第43页
        3.2.5 数据库和分析软件第43-44页
    3.3 实验方法第44-48页
        3.3.1 蛋白酶3C的基因克隆第44页
        3.3.2 重组酶的异源表达第44-45页
        3.3.3 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)检测第45页
        3.3.4 胞内蛋白酶的分离纯化第45页
        3.3.5 胞外蛋白酶的分离纯化第45-46页
        3.3.6 蛋白酶的活性检测第46-47页
        3.3.7 蛋白浓度测定第47页
        3.3.8 最适反应温度及温度稳定性分析第47页
        3.3.9 最适反应pH第47-48页
        3.3.10 NaCl对酶活性的影响第48页
        3.3.11 金属离子对酶活性的影响第48页
        3.3.12 抑制剂与变性剂对酶活性的影响第48页
    3.4 结果与分析第48-61页
        3.4.0 蛋白酶3C的基因克隆第48-49页
        3.4.1 蛋白酶3C基因序列分析以及结构域分析第49-51页
        3.4.2 蛋白酶3C的异源表达第51-52页
        3.4.3 胞内蛋白酶3C的分离纯化及活性检测第52-53页
        3.4.4 胞外蛋白酶3C的表达及纯化第53-56页
            3.4.4.1 酪氨酸标准曲线的制作第53-54页
            3.4.4.2 发酵条件的优化第54页
            3.4.4.3 胞外蛋白酶3C的纯化第54-55页
            3.4.4.4 蛋白酶3C活性的检测第55-56页
        3.4.5 蛋白酶3C Superdex-75凝胶过滤层析纯化效果分析第56-57页
        3.4.6 蛋白酶3C底物特异性分析第57页
        3.4.7 最适反应温度及温度稳定性分析第57-58页
        3.4.8 最适pH分析第58-59页
        3.4.9 NaCl对酶活的影响第59页
        3.4.10 金属离子对酶活的影响第59-60页
        3.4.11 抑制剂对酶活的影响第60-61页
    3.5 讨论第61-63页
全文总结与展望第63-64页
参考文献第64-69页
致谢第69-70页
学位论文评阅及答辩情况表第70页

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