| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-32页 |
| 1.1 引言 | 第13-14页 |
| 1.2 稻瘟病菌研究概况 | 第14-16页 |
| 1.2.1 稻瘟病菌的生物学特征 | 第14-15页 |
| 1.2.2 稻瘟病菌致病特性 | 第15页 |
| 1.2.3 稻瘟病菌的生物防治 | 第15-16页 |
| 1.3 鳗弧菌研究概况 | 第16-17页 |
| 1.3.1 鳗弧菌致病机理概况 | 第16-17页 |
| 1.3.2 鳗弧菌生物防治 | 第17页 |
| 1.4 海洋来源的微生物活性物质 | 第17-19页 |
| 1.5 微生物生防菌株的研究概况 | 第19-30页 |
| 1.5.1 生防假单胞菌研究进展 | 第19-24页 |
| 1.5.2 生防芽孢杆菌研究进展 | 第24-29页 |
| 1.5.3 其他生防菌株的研究进展 | 第29-30页 |
| 1.6 研究内容和意义 | 第30-32页 |
| 第二章 实验材料 | 第32-35页 |
| 2.1 实验试剂 | 第32-33页 |
| 2.2 实验设备 | 第33-35页 |
| 第三章 拮抗鳗弧菌C312的海洋细菌的筛选和抗菌机理初步研究. | 第35-60页 |
| 3.1 前言 | 第35-36页 |
| 3.2 实验菌株和培养基 | 第36-37页 |
| 3.2.1 菌株 | 第36-37页 |
| 3.2.2 培养基 | 第37页 |
| 3.3 实验材料 | 第37页 |
| 3.4 实验方法 | 第37-47页 |
| 3.4.1 拮抗鳗弧菌C312的海洋来源菌株筛选及鉴定 | 第37-38页 |
| 3.4.2 活性产物的分离,纯化和结构鉴定 | 第38-42页 |
| 3.4.3 PCA生物合成基因簇分析 | 第42-43页 |
| 3.4.4 PCA拮抗鳗弧菌C312的MIC和IC50值测定 | 第43页 |
| 3.4.5 PCA对烟草黑胫病菌生长的抑制作用 | 第43页 |
| 3.4.6 PCA拮抗鳗弧菌C312形态学变化的SEM观察 | 第43-44页 |
| 3.4.7 PCA拮抗鳗弧菌C312形态学变化的TEM观察 | 第44页 |
| 3.4.8 SEM观察PCA拮抗烟草黑胫病菌形态学变化 | 第44页 |
| 3.4.9 TEM观察PCA拮抗烟草黑胫病菌形态学变化 | 第44-45页 |
| 3.4.10 PCA对鳗弧菌C312和肺癌细胞系A549胞内ROS的影响 | 第45-46页 |
| 3.4.11 PCA抑制鳗弧菌C312对斑马鱼卵发育的感染 | 第46页 |
| 3.4.12 PCA拮抗烟草黑胫病菌的温室防控实验 | 第46页 |
| 3.4.13 统计学分析 | 第46-47页 |
| 3.5 实验结果 | 第47-58页 |
| 3.5.1 拮抗鳗弧菌C312海洋细菌的分离和鉴定 | 第47页 |
| 3.5.2 P.aeruginosa PA31x活性产物的分离纯化 | 第47-48页 |
| 3.5.3 P.aeruginosa PA31x活性产物的核磁共振分析 | 第48-50页 |
| 3.5.4 PCA对鳗弧菌C312菌株的MIC和IC50值检测 | 第50-51页 |
| 3.5.5 P.aeruginosa PA31x菌株合成PCA的基因簇分析 | 第51-52页 |
| 3.5.6 电镜观察PCA对鳗弧菌C312和烟草黑胫病菌形态学变化的影响 | 第52-54页 |
| 3.5.7 PCA诱导鳗弧菌C312和肺癌细胞系A549胞内ROS的积累 | 第54-55页 |
| 3.5.8 PCA降低鳗弧菌C312对斑马鱼卵的侵染 | 第55-57页 |
| 3.5.9 PCA防控烟草黑胫病菌的温室实验 | 第57-58页 |
| 3.6 结果讨论 | 第58-60页 |
| 第四章 海洋芽孢杆菌源丰原素的分离纯化及其抗稻瘟病菌的分子机理研究 | 第60-98页 |
| 4.1 前言 | 第60-61页 |
| 4.2 实验菌株和培养基 | 第61-62页 |
| 4.2.1 菌株 | 第61页 |
| 4.2.2 培养基 | 第61-62页 |
| 4.3 实验材料 | 第62-63页 |
| 4.4 实验方法 | 第63-72页 |
| 4.4.1 抗菌活性菌株的分离和鉴定 | 第63页 |
| 4.4.2 活性物质的分离、纯化和结构鉴定 | 第63-64页 |
| 4.4.3 B.subtilis BS155菌株的全基因组测序 | 第64-65页 |
| 4.4.4 稻瘟病菌菌丝体的制备 | 第65页 |
| 4.4.5 fengycin BS155对稻瘟病菌的致死性和细胞完整性检测 | 第65页 |
| 4.4.6 SEM观察fengycin BS155处理的稻瘟病菌菌丝细胞结构变化 | 第65-66页 |
| 4.4.7 TEM观察fengycin BS155处理的稻瘟病菌菌丝细胞结构变化 | 第66页 |
| 4.4.8 Fengycin BS155处理的稻瘟病菌菌丝蛋白组学分析 | 第66页 |
| 4.4.9 稻瘟病菌菌丝ROS和MMP的检测 | 第66-67页 |
| 4.4.10 稻瘟病菌菌丝的SOD和CAT酶活检测 | 第67-68页 |
| 4.4.11 稻瘟病菌菌丝DNA皱缩的检测 | 第68-69页 |
| 4.4.12 稻瘟病菌菌丝基因荧光定量(qRT-PCR)分析 | 第69-71页 |
| 4.4.13 稻瘟病菌菌丝Western Blot检测 | 第71-72页 |
| 4.5 实验结果 | 第72-95页 |
| 4.5.1 菌株BS155及其代谢产物对稻瘟病菌生长的抑制作用 | 第72-73页 |
| 4.5.2 BS155菌株的鉴定 | 第73页 |
| 4.5.3 B.subtilis BS155活性产物的分离和鉴定 | 第73-77页 |
| 4.5.4 B.subtilis BS155全基因组测序 | 第77-78页 |
| 4.5.5 丰原素生物合成相关基因分析 | 第78-79页 |
| 4.5.6 Fengycin BS155对稻瘟病菌菌丝亚显微结构的影响 | 第79-80页 |
| 4.5.7 Fengycin BS155拮抗稻瘟病菌的蛋白组学分析 | 第80-82页 |
| 4.5.8 Fengycin BS155对稻瘟病菌的致死性和细胞完整性影响 | 第82-85页 |
| 4.5.9 Fengycin BS155诱导稻瘟病菌菌丝细胞内ROS的积累 | 第85-89页 |
| 4.5.10 Fengycins BS155诱导稻瘟病菌菌丝细胞内染色体的损伤 | 第89-95页 |
| 4.5.11 Fengycin BS155抑制稻瘟病生长模式图 | 第95页 |
| 4.6 结果讨论 | 第95-98页 |
| 全文总结和创新点 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-111页 |
| 致谢 | 第111-113页 |
| 作者简历及攻读学位期间发表的学术论文和研究成果 | 第113-114页 |
