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多肽类靶向基因载体的制备及其转染性能研究

摘要第5-8页
Abstract第8-10页
第一章 绪论第15-68页
    1.1 基因治疗概述第15-17页
        1.1.1 基因治疗的概念和分类第15页
        1.1.2 基因治疗的发展现状第15-17页
    1.2 治疗基因概述第17-20页
        1.2.1 含致癌基因编码的寡聚核苷酸和siRNA第17页
        1.2.2 肿瘤抑制基因第17-18页
        1.2.3 血管生成抑制基因第18页
        1.2.4 肿瘤自杀基因第18页
        1.2.5 药物抗性基因第18-19页
        1.2.6 血管疾病相关基因第19页
        1.2.7 信使RNA第19-20页
    1.3 基因治疗的物理手段第20-22页
    1.4 基因治疗的生物手段第22-24页
        1.4.1 基于病毒载体的基因治疗第22-23页
        1.4.2 基于细胞载体的基因治疗第23-24页
    1.5 基因治疗的化学手段第24-36页
        1.5.1 基于聚乙烯亚胺(PEI)载体的基因治疗第25页
        1.5.2 基于聚赖氨酸(PLL)载体的基因治疗第25-26页
        1.5.3 基于壳聚糖(Chitosan)载体的基因治疗第26-27页
        1.5.4 基于树枝状大分子(Dendrimer)载体的基因治疗第27-28页
        1.5.5 基于多肽(Peptide)载体的基因治疗第28-35页
        1.5.6 基于阳离子脂质体(Liposome)载体的基因治疗第35-36页
    1.6 亲和素-生物素系统概述第36-40页
        1.6.1 亲和素-生物素系统第36-38页
        1.6.2 亲和素-生物素系统在生化检测中的应用第38页
        1.6.3 亲和素-生物素系统在高效液相色谱中的应用第38-39页
        1.6.4 亲和素-生物素系统在生物诊断中的应用第39页
        1.6.5 亲和素-生物素系统在疾病治疗中的应用第39-40页
        1.6.6 亲和素-生物素系统在层层自组装中的应用第40页
    1.7 选题思路第40-43页
    参考文献第43-68页
第二章 含穿膜肽和核定位信号肽的基因载体用于体外与体内基因治疗的研究第68-93页
    2.1 前言第68-70页
    2.2 实验部分第70-78页
        2.2.1 试剂第70页
        2.2.2 细胞培养第70-71页
        2.2.3 质粒DNA的扩增、提取和纯化第71页
        2.2.4 多肽固相合成与表征第71-72页
        2.2.5 多肽/DNA复合物的制备第72页
        2.2.6 琼脂糖凝胶电泳第72-73页
        2.2.7 多肽/DNA复合物粒径和zeta-电位的测定第73页
        2.2.8 体外细胞毒性检测第73-74页
        2.2.9 多肽介导的体外转染实验第74页
        2.2.10 多肽介导的体外VEGF蛋白表达实验第74-75页
        2.2.11 大鼠后肢缺血模型造模第75页
        2.2.12 体内基因治疗方案第75-76页
        2.2.13 体内毒性检测第76-77页
        2.2.14 体内VEGF蛋白表达检测第77页
        2.2.15 促进血管新生效果检测第77页
        2.2.16 统计学分析第77-78页
    2.3 结果与讨论第78-87页
        2.3.1 多肽的合成与表征第78-79页
        2.3.2 琼脂糖凝胶电泳第79-80页
        2.3.3 复合物的粒径和zeta-电位第80-81页
        2.3.4 多肽的体外细胞毒性第81页
        2.3.5 多肽介导的体外基因转染第81-83页
        2.3.6 多肽介导的体外VEGF蛋白表达第83-84页
        2.3.7 多肽介导的体内基因转染第84页
        2.3.8 多肽的体内毒性第84-85页
        2.3.9 体内VEGF蛋白的表达第85-86页
        2.3.10 体内血管新生效果检测第86-87页
    2.4 结论第87-88页
    参考文献第88-93页
第三章 多肽/亲和素/生物素化人转铁蛋白偶联基因载体的制备及肿瘤靶向性研究第93-119页
    3.1 前言第93-95页
    3.2 实验部分第95-101页
        3.2.1 试剂第95-96页
        3.2.2 细胞培养第96页
        3.2.3 质粒DNA的扩增、提取和纯化第96页
        3.2.4 多肽固相合成与表征第96页
        3.2.5 多肽/DNA复合物的制备第96-97页
        3.2.6 琼脂糖凝胶电泳第97页
        3.2.7 复合物粒径和zeta-电位的测定第97-98页
        3.2.8 复合物形态观测第98页
        3.2.9 复合物稳定性检测第98页
        3.2.10 体外细胞毒性检测第98-99页
        3.2.11 复合物的体外转染实验第99-100页
        3.2.12 复合物介导的体外p53蛋白表达实验第100页
        3.2.13 统计学分析第100-101页
    3.3 结果与讨论第101-112页
        3.3.1 多肽的合成与表征第101页
        3.3.2 多肽/DNA复合物的制备第101-102页
        3.3.3 琼脂糖凝胶电泳第102-103页
        3.3.4 复合物的粒径和zeta-电位第103-104页
        3.3.5 复合物形态观测第104-105页
        3.3.6 复合物稳定性第105-106页
        3.3.7 体外细胞毒性第106-107页
        3.3.8 体外基因转染第107-109页
        3.3.9 体外p53蛋白的表达第109-112页
    3.4 结论第112页
    参考文献第112-119页
第四章 亲和素偶联生物素化多肽基因载体的体外及体内肿瘤治疗研究第119-143页
    4.1 前言第119-121页
    4.2 实验部分第121-128页
        4.2.1 试剂第121页
        4.2.2 细胞培养第121-122页
        4.2.3 质粒DNA的扩增、提取和纯化第122页
        4.2.4 生物素化多肽的固相合成与表征第122页
        4.2.5 亲和素偶联生物素化多肽基因载体(TAC)的制备第122-123页
        4.2.6 琼脂糖凝胶电泳第123页
        4.2.7 复合物粒径和zeta-电位的测定第123页
        4.2.8 体外细胞毒性检测第123-124页
        4.2.9 体外转染实验第124-125页
        4.2.10 复合物介导的体外p53蛋白表达实验第125页
        4.2.11 Western Blotting免疫印迹检测第125-126页
        4.2.12 小鼠实体瘤模型造模第126-127页
        4.2.13 体内基因治疗方案第127页
        4.2.14 逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)检测第127页
        4.2.15 统计学分析第127-128页
    4.3 结果与讨论第128-138页
        4.3.1 生物素化多肽的合成与表征第128-129页
        4.3.2 琼脂糖凝胶电泳第129-130页
        4.3.3 复合物的粒径和zeta-电位第130-131页
        4.3.4 体外细胞毒性第131-132页
        4.3.5 体外基因转染第132-134页
        4.3.6 体外p53蛋白的表达第134-136页
        4.3.7 体内肿瘤抑制效应第136-138页
        4.3.8 p53基因的瘤内表达第138页
    4.4 结论第138-139页
    参考文献第139-143页
第五章 亲和素-生物素系统介导的多肽基因载体靶向性转运研究第143-163页
    5.1 前言第143-144页
    5.2 实验部分第144-151页
        5.2.1 试剂第144-145页
        5.2.2 细胞培养第145页
        5.2.3 质粒DNA的扩增、提取和纯化第145-146页
        5.2.4 生物素化多肽的固相合成与表征第146页
        5.2.5 多肽/DNA复合物的制备第146页
        5.2.6 琼脂糖凝胶电泳第146页
        5.2.7 多肽/DNA复合物粒径和zeta-电位的测定第146-147页
        5.2.8 体外细胞毒性检测第147页
        5.2.9 体外细胞修饰及表征第147-148页
        5.2.10 体外修饰细胞的转染及吞噬第148-149页
        5.2.11 体内基因治疗方案第149-150页
        5.2.12 逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)检测第150页
        5.2.13 Western Blotting免疫印迹检测第150页
        5.2.14 促进血管新生效果检测第150页
        5.2.15 体内VEGF蛋白表达检测第150页
        5.2.16 统计学分析第150-151页
    5.3 结果与讨论第151-159页
        5.3.1 生物素化多肽的合成与表征第151页
        5.3.2 琼脂糖凝胶电泳第151-152页
        5.3.3 复合物的粒径和zeta-电位第152-153页
        5.3.4 多肽的体外细胞毒性第153页
        5.3.5 体外细胞修饰及表征第153-156页
        5.3.6 体外修饰细胞的转染及吞噬第156-157页
        5.3.7 VEGF基因和蛋白的体内表达第157-158页
        5.3.8 体内促进血管新生效果与VEGF蛋白的表达第158-159页
    5.4 结论第159-160页
    参考文献第160-163页
附录 作者在攻读博士学位期间已发表和待发表的论文第163-164页
致谢第164页

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