| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 符号说明 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-16页 |
| 研究现状、成果 | 第12-15页 |
| 研究目的、方法 | 第15-16页 |
| 一、miR-20a在宫颈癌细胞中的作用研究 | 第16-35页 |
| 1.1 对象和方法 | 第16-27页 |
| 1.1.1 实验对象 | 第16-18页 |
| 1.1.2 实验方法 | 第18-27页 |
| 1.2 结果 | 第27-33页 |
| 1.2.1 Real-time PCR检测miR-20a在宫颈癌组织和癌旁正常宫颈组织中的差异表达 | 第27-28页 |
| 1.2.2 细胞转染效率检测 | 第28页 |
| 1.2.3 pcDNA3/pri-miR-20a质粒的构建及Real-time PCR检测pcDNA3/pri-miR-20a和封闭miR-20a质粒的有效性 | 第28-29页 |
| 1.2.4 miR-20a对宫颈癌细胞短期生长活性的影响 | 第29-30页 |
| 1.2.5 miR-20a对宫颈癌细胞集落形成能力的影响 | 第30-31页 |
| 1.2.6 过表达miR-20a或是封闭miR-20a对宫颈癌细胞迁移和侵袭能力的影响 | 第31-33页 |
| 1.3 讨论 | 第33页 |
| 1.4 小结 | 第33-35页 |
| 二、miR-20a在宫颈癌细胞中靶基因的确定及验证 | 第35-52页 |
| 2.1 对象和方法 | 第35-43页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第35-37页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第37-43页 |
| 2.2 结果 | 第43-49页 |
| 2.2.1 生物学预测miR-20a的靶基因和EGFP荧光报告载体的构建 | 第43-44页 |
| 2.2.2 EGFP荧光报告载体实验验证TNKS2是miR-20a的直接靶基因 | 第44-46页 |
| 2.2.3 过表达miR-20a或是封闭miR-20a后的HeLa和C-33A细胞和宫颈癌组织中TNKS2 mRNA的表达水平 | 第46-48页 |
| 2.2.4 过表达miR-20a或是封闭miR-20a后的HeLa细胞和C-33A细胞中TNKS2蛋白的表达水平 | 第48-49页 |
| 2.3 讨论 | 第49-50页 |
| 2.4 小结 | 第50-52页 |
| 三、TNKS2在宫颈癌细胞中的作用研究 | 第52-60页 |
| 3.1 对象和方法 | 第52-53页 |
| 3.1.1 实验对象 | 第52页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第52-53页 |
| 3.2 结果 | 第53-57页 |
| 3.2.1 pSilencer/siR-TNKS2质粒的构建 | 第53页 |
| 3.2.2 pSilencer/siR-TNKS2质粒的有效性 | 第53-54页 |
| 3.2.3 TNKS2对宫颈癌细胞短期生长活性的影响 | 第54-55页 |
| 3.2.4 TNKS2对宫颈癌细胞集落形成能力的影响 | 第55-56页 |
| 3.2.5 沉默TNKS2基因后对宫颈癌细胞迁移和侵袭能力的影响 | 第56-57页 |
| 3.3 讨论 | 第57-59页 |
| 3.4 小结 | 第59-60页 |
| 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第66-67页 |
| 综述 | 第67-76页 |
| 综述参考文献 | 第72-76页 |
| 致谢 | 第76页 |
