| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 引言 | 第10-26页 |
| 1.1 蛋白质药物的发展以及输送途径 | 第10-13页 |
| 1.1.1 蛋白质药物的发展与局限性 | 第10-11页 |
| 1.1.2 不同的蛋白药物的输送途径 | 第11-13页 |
| 1.2 超氧化物歧化酶的药用机理与应用现状 | 第13-16页 |
| 1.2.1 超氧化物歧化酶的药用机理 | 第13-14页 |
| 1.2.2 超氧化物歧化酶的应用现状 | 第14-16页 |
| 1.3 基于壳聚糖及其衍生物的蛋白药物载送体系 | 第16-25页 |
| 1.3.1 壳聚糖的基本性质 | 第16-17页 |
| 1.3.2 壳聚糖的衍生物和改性方法 | 第17-19页 |
| 1.3.2.1 羧甲基壳聚糖 | 第17-18页 |
| 1.3.2.2 聚乙二醇壳聚糖 | 第18页 |
| 1.3.2.3 季铵化壳聚糖 | 第18-19页 |
| 1.3.3 制备壳聚糖及其衍生物纳米/微米蛋白药物载体的方法 | 第19-22页 |
| 1.3.3.1 离子交联纳米粒子 | 第19-20页 |
| 1.3.3.2 共价键交联纳米/微米粒子 | 第20-21页 |
| 1.3.3.3 干燥法制备壳聚糖载药粒了 | 第21-22页 |
| 1.3.4 疏水修饰的多糖自组装纳米粒子 | 第22-25页 |
| 1.4 本论文课题的主要内容 | 第25-26页 |
| 第二章 超氧化物歧化酶与胆酸修饰的季铵化壳聚糖复合纳米粒子 | 第26-51页 |
| 2.1 引言 | 第26-27页 |
| 2.2 实验部分 | 第27-35页 |
| 2.2.1 试剂规格 | 第27-28页 |
| 2.2.1.1 细胞实验 | 第27-28页 |
| 2.2.1.2 动物实验 | 第28页 |
| 2.2.2 样品的制备 | 第28-29页 |
| 2.2.2.1 壳聚糖的季铵化改性 | 第28页 |
| 2.2.2.2 季铵化壳聚糖的疏水性修饰 | 第28-29页 |
| 2.2.3 样品溶液 | 第29页 |
| 2.2.4 SOD与不同疏水改性的季铵化壳聚糖的结合 | 第29页 |
| 2.2.4.1 SOD与季铵化壳聚糖的结合 | 第29页 |
| 2.2.4.2 SOD与胆酸修饰的季铵化壳聚糖的结合 | 第29页 |
| 2.2.5 SOD的浓度与活性的测定 | 第29-30页 |
| 2.2.6 SOD的体外模拟释放 | 第30-31页 |
| 2.2.7 仪器与测试 | 第31-33页 |
| 2.2.7.1 核磁共振分析 | 第31页 |
| 2.2.7.2 红外光谱分析法 | 第31页 |
| 2.2.7.3 电导滴定法 | 第31-32页 |
| 2.2.7.4 紫外-可见吸收光谱 | 第32页 |
| 2.2.7.5 稳态荧光测试 | 第32页 |
| 2.2.7.6 ζ-电位和光散射粒径测试 | 第32页 |
| 2.2.7.7 电子显微镜测试 | 第32-33页 |
| 2.2.8 MTS细胞实验 | 第33页 |
| 2.2.9 流式细胞计数法和共聚焦显微镜法 | 第33页 |
| 2.2.10 大鼠动物实验 | 第33-34页 |
| 2.2.11 数据分析方法 | 第34-35页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第35-49页 |
| 2.3.1 胆酸修饰的季铵化壳聚糖的合成与结构表征 | 第35-37页 |
| 2.3.2 胆酸修饰的季铵化壳聚糖的疏水性表征 | 第37-39页 |
| 2.3.3 SOD与不同疏水改性的季铵化壳聚糖的结合 | 第39-45页 |
| 2.3.3.1 SOD与季铵化壳聚糖及胆酸修饰的季铵化壳聚糖的结合 | 第39-41页 |
| 2.3.3.2 ζ-电位,粒径大小和形貌表征 | 第41-44页 |
| 2.3.3.3 SOD的体外模拟释放 | 第44-45页 |
| 2.3.4 HTCC_(17)-CA_(13)的细胞毒性 | 第45页 |
| 2.3.5 流式细胞计数法和荧光显微镜检测 | 第45-47页 |
| 2.3.6 包埋SOD纳米粒子在大鼠体内的血清与脏器分布 | 第47-49页 |
| 2.3.6.1 不同时间大鼠体内的血清分布 | 第47-48页 |
| 2.3.6.2 大鼠体内的SOD的脏器分布 | 第48-49页 |
| 2.4 本章小结 | 第49-51页 |
| 第三章 超氧化物歧化酶与油酸取代的季铵化壳聚糖的结合和释放 | 第51-63页 |
| 3.1 引言 | 第51页 |
| 3.2 实验部分 | 第51-55页 |
| 3.2.1 试剂规格 | 第51-52页 |
| 3.2.2 样品的制备 | 第52-53页 |
| 3.2.2.1 油酸取代的季铵化壳聚糖的制备 | 第52-53页 |
| 3.2.2.2 超氧化酶歧化酶和聚合物溶液 | 第53页 |
| 3.2.3 SOD与油酸取代的季铵化壳聚糖的结合与释放 | 第53-54页 |
| 3.2.3.1 SOD与油酸取代的季铵化壳聚糖的结合 | 第53页 |
| 3.2.3.2 SOD的体外模拟缓释 | 第53-54页 |
| 3.2.4 仪器与测试 | 第54-55页 |
| 3.2.4.1 核磁共振分析 | 第54页 |
| 3.2.4.2 红外光谱分析法 | 第54页 |
| 3.2.4.3 电导滴定法 | 第54页 |
| 3.2.4.4 紫外-可见吸收光谱 | 第54页 |
| 3.2.4.5 稳态荧光测试 | 第54页 |
| 3.2.4.6 ζ-电位和光散射粒径测试 | 第54页 |
| 3.2.4.7 电子显微镜测试 | 第54页 |
| 3.2.4.8 MTS细胞实验 | 第54-55页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第55-62页 |
| 3.3.1 油酸疏水修饰的季铵化壳聚糖的合成 | 第55页 |
| 3.3.2 油酸接枝季铵化壳聚糖的结构表征 | 第55-57页 |
| 3.3.3 油酸修饰的季铵化壳聚糖的疏水性表征 | 第57页 |
| 3.3.4 HTCC_(30)-OA_7的MTS细胞毒性 | 第57-58页 |
| 3.3.5 SOD与油酸修饰的季铵化壳聚糖的结合与释放 | 第58-60页 |
| 3.3.5.1 SOD与油酸修饰的季铵化壳聚糖的结合 | 第58-59页 |
| 3.3.5.2 SOD的体外模拟释放 | 第59-60页 |
| 3.3.6 ζ-电位、粒径大小和形貌表征 | 第60-62页 |
| 3.4 本章总结 | 第62-63页 |
| 论文主要结论和展望 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-79页 |
| 作者简历 | 第79页 |
| 硕士期间发表论文情况 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
