| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 绪论 | 第8-19页 |
| 1.1 纳米材料的简介 | 第8-9页 |
| 1.1.1 纳米材料的制备 | 第8-9页 |
| 1.1.2 纳米材料的表征和测试技术 | 第9页 |
| 1.2 生物传感器的概述 | 第9-10页 |
| 1.2.1 生物传感器的原理 | 第9-10页 |
| 1.2.2 生物传感器的分类和特点 | 第10页 |
| 1.3 电化学生物传感器 | 第10-13页 |
| 1.3.1 电化学酶传感器 | 第11-12页 |
| 1.3.2 电化学无酶传感器 | 第12-13页 |
| 1.4 纳米复合材料在电化学生物传感的应用 | 第13-17页 |
| 1.4.1 碳纳米管简介及应用 | 第14-16页 |
| 1.4.2 二硫化钼纳米材料的简介及应用 | 第16-17页 |
| 1.5 本论文的选题依据和研究内容 | 第17-19页 |
| 第二章 Nafion/硫堇/铂纳米线复合膜用于酶固定和电催化氧化葡萄糖的研究 | 第19-28页 |
| 2.1 引言 | 第19-20页 |
| 2.2 实验部分 | 第20-22页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第20页 |
| 2.2.2 主要仪器与设备 | 第20-21页 |
| 2.2.3 多臂交联铂纳米线(PtNW)的制备 | 第21页 |
| 2.2.4 葡萄糖生物传感电极的制备 | 第21页 |
| 2.2.5 电化学检测方法 | 第21-22页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第22-27页 |
| 2.3.1 多臂交联铂纳米线的表征 | 第22页 |
| 2.3.2 电极的电化学特性 | 第22-23页 |
| 2.3.3 实验条件的优化 | 第23-24页 |
| 2.3.4 不同酶电极的葡萄糖电催化活性 | 第24-25页 |
| 2.3.5 酶电极的线性范围和检测限 | 第25页 |
| 2.3.6 稳定性、重现性和选择性考察 | 第25-26页 |
| 2.3.7 酶生物传感器的初步应用 | 第26-27页 |
| 2.4 小结 | 第27-28页 |
| 第三章 基于CuS-MoS_2复合材料用于无酶电催化氧化葡萄糖的研究 | 第28-39页 |
| 3.1 引言 | 第28-29页 |
| 3.2 实验部分 | 第29-31页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第29页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第29-30页 |
| 3.2.3 纳米复合材料CuS-MoS_2的制备 | 第30页 |
| 3.2.4 纳米复合材料CuS-MoS_2修饰电极的制备 | 第30页 |
| 3.2.5 电化学检测方法 | 第30-31页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第31-38页 |
| 3.3.1 纳米复合材料CuS-MoS_2的表征 | 第31-32页 |
| 3.3.2 电极的电化学特性 | 第32-34页 |
| 3.3.3 实验条件的优化 | 第34-35页 |
| 3.3.4 复合材料CuS-MoS_2对葡萄糖响应性能 | 第35-36页 |
| 3.3.5 重现性、选择性和稳定性考察 | 第36-37页 |
| 3.3.6 血清样品的检测 | 第37-38页 |
| 3.4 小结 | 第38-39页 |
| 第四章 基于MoS_2-CNTs复合材料构建的无酶催化H_2O_2传感器的研究 | 第39-50页 |
| 4.1 引言 | 第39-40页 |
| 4.2 实验部分 | 第40-42页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第40页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第40-41页 |
| 4.2.3 纳米复合材料MoS_2-CNTs的制备 | 第41页 |
| 4.2.4 电化学传感器的构建 | 第41页 |
| 4.2.5 电化学检测方法 | 第41-42页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第42-49页 |
| 4.3.1 纳米复合材料的表征 | 第42-43页 |
| 4.3.2 不同修饰电极的电化学阻抗表征 | 第43-44页 |
| 4.3.3 电极的电化学特性 | 第44-45页 |
| 4.3.4 实验条件的优化 | 第45-46页 |
| 4.3.5 利用计时电流法测定H_2O_2 | 第46-47页 |
| 4.3.6 重现性、稳定性和选择性考察 | 第47-48页 |
| 4.3.7 实际样品的检测 | 第48-49页 |
| 4.4 小结 | 第49-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 个人简历 | 第62-63页 |
