qPCR快速检测桃枝干组织病原菌Botryosphaeria dothidea
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第11-22页 |
| 1.1 桃树流胶病的发病症状 | 第11页 |
| 1.2 桃树流胶病的分布和危害 | 第11页 |
| 1.3 桃树流胶病的病因 | 第11-12页 |
| 1.4 桃树流胶病病原菌 | 第12-14页 |
| 1.4.1 桃树流胶病病原菌研究 | 第12-13页 |
| 1.4.2 桃树流胶病菌的形态学特性 | 第13页 |
| 1.4.3 桃树流胶病菌的生物学特性 | 第13-14页 |
| 1.5 桃树流胶病防治研究进展 | 第14-17页 |
| 1.5.1 桃树流胶病抗性品种研究 | 第14-15页 |
| 1.5.2 桃树流胶病农业防治研究 | 第15页 |
| 1.5.3 桃树流胶病化学防治研究 | 第15-16页 |
| 1.5.4 桃树流胶病生物防治研究 | 第16-17页 |
| 1.6 植物病原菌检测研究进展 | 第17-21页 |
| 1.6.1 植物病原菌检测的传统方法 | 第17-18页 |
| 1.6.2 植物病原菌检测的血清学技术 | 第18-19页 |
| 1.6.3 植物病原菌检测的分子生物学检测技术 | 第19-21页 |
| 1.7 植物基因组DNA的提取方法研究 | 第21页 |
| 1.8 本研究的目的和意义 | 第21-22页 |
| 2 材料和方法 | 第22-29页 |
| 2.1 试验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 供试菌株 | 第22页 |
| 2.1.2 供试枝干组织样品 | 第22-23页 |
| 2.1.3 供试培养基 | 第23页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第23页 |
| 2.1.5 仪器和设备 | 第23页 |
| 2.2 试验方法 | 第23-29页 |
| 2.2.1 DNA提取 | 第23-24页 |
| 2.2.2 DNA样品中PCR抑制物检测 | 第24-25页 |
| 2.2.3 特异性引物设计 | 第25-27页 |
| 2.2.4 引物特异性检测 | 第27-28页 |
| 2.2.5 PCR扩增产物的特异性 | 第28页 |
| 2.2.6 引物的灵敏度检测和DNA标准曲线构建 | 第28页 |
| 2.2.7 相对定量PCR体系的构建 | 第28-29页 |
| 2.2.8 桃枝干病部组织病原菌检测 | 第29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-37页 |
| 3.0 桃组织基因组DNA提取 | 第29-30页 |
| 3.1 PCR抑制物检测 | 第30-31页 |
| 3.2 引物设计 | 第31页 |
| 3.3 引物特异性检测 | 第31-33页 |
| 3.4 引物扩增产物的特异性检测 | 第33-34页 |
| 3.5 引物的灵敏度检测 | 第34-35页 |
| 3.6 相对定量PCR体系的构建 | 第35-36页 |
| 3.7 桃树流胶病样品检测 | 第36-37页 |
| 4 讨论 | 第37-40页 |
| 4.1 DNA提取方法的讨论 | 第37-38页 |
| 4.2 引物设计的特异性的讨论 | 第38-39页 |
| 4.3 检测病原菌的讨论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-46页 |
| 附录Ⅰ 课题资助情况 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47页 |
