| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 中英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-15页 |
| 第2章 结核病患者LDGs的水平、分子表型及其与TB严重程度的相关性研究 | 第15-26页 |
| 2.1 材料 | 第15-16页 |
| 2.1.1 研究对象选择及分组 | 第15页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第15-16页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第16页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制 | 第16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-19页 |
| 2.2.1 外周血标本采集及PBMC分离 | 第16-17页 |
| 2.2.2 外周血中中性粒细胞的分离和纯化 | 第17页 |
| 2.2.3 流式细胞术检测LDGs比例 | 第17页 |
| 2.2.4 流式细胞术检测LDGs的分子表型 | 第17-18页 |
| 2.2.5 流式细胞术检测LDGs凋亡水平 | 第18页 |
| 2.2.6 流式细胞术检测LDGs的ROS水平 | 第18页 |
| 2.2.7 统计学处理 | 第18-19页 |
| 2.3 结果 | 第19-24页 |
| 2.3.1 TB患者与健康对照组LDGs的比例 | 第19-21页 |
| 2.3.2 TB患者治疗后LDGs比例的变化 | 第21页 |
| 2.3.3 TB患者LDGs表面分子的表达量 | 第21-22页 |
| 2.3.4 TB患者LDGs凋亡水平的检测 | 第22-23页 |
| 2.3.5 TB患者LDGs ROS水平的检测 | 第23-24页 |
| 2.4 讨论 | 第24-26页 |
| 第3章 LDGs的来源及具体形成机制探讨 | 第26-39页 |
| 3.1 材料 | 第26-27页 |
| 3.1.1 实验对象 | 第26页 |
| 3.1.2 菌株 | 第26页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第26-27页 |
| 3.1.4 主要仪器 | 第27页 |
| 3.2 实验方法 | 第27-31页 |
| 3.2.1 H37Rv、BCG、MS培养和悬液制备 | 第27页 |
| 3.2.2 分枝杆菌全血水平感染及LDGs水平检测 | 第27-28页 |
| 3.2.3 分枝杆菌中性粒细胞水平感染及LDGs水平检测 | 第28-29页 |
| 3.2.4 不同毒力的分枝杆菌全血水平感染及LDGs水平检测 | 第29页 |
| 3.2.5 流式细胞术检测中性粒细胞凋亡水平 | 第29-30页 |
| 3.2.6 凋亡抑制剂对LDGs形成的影响及LDGs水平检测 | 第30页 |
| 3.2.7 流式细胞术检测中性粒细胞ROS水平 | 第30页 |
| 3.2.8 NAC对LDGs形成的影响及LDGs水平检测 | 第30-31页 |
| 3.2.9 统计学处理 | 第31页 |
| 3.3 结果 | 第31-37页 |
| 3.3.1 Mtb体外诱导中性粒细胞转化成LDGs | 第31-32页 |
| 3.3.2 不同毒力的分枝杆菌对LDGs形成的影响 | 第32-33页 |
| 3.3.3 细胞凋亡对LDGs形成的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.4 细胞活化对LDGs形成的影响 | 第34-37页 |
| 3.4 讨论 | 第37-39页 |
| 第4章 LDGs对结核分枝杆菌的吞噬和杀伤功能初探 | 第39-45页 |
| 4.1 材料 | 第39-40页 |
| 4.1.1 实验对象和菌株 | 第39页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第39页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第39-40页 |
| 4.2 实验方法 | 第40-41页 |
| 4.2.1 TB患者LDGs吞噬功能的检测 | 第40页 |
| 4.2.2 体外诱导形成的LDGs的吞噬功能检测 | 第40页 |
| 4.2.3 LDGs对Mtb杀菌功能检测 | 第40-41页 |
| 4.2.4 统计学处理 | 第41页 |
| 4.3 结果 | 第41-44页 |
| 4.3.1 LDGs吞噬H37Rv-GFP的功能 | 第41-43页 |
| 4.3.2 体外诱导LDGs杀伤H37Rv的功能 | 第43-44页 |
| 4.4 讨论 | 第44-45页 |
| 第5章 结论与展望 | 第45-46页 |
| 5.1 结论 | 第45页 |
| 5.2 展望 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-49页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第49-50页 |
| 综述 | 第50-58页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
