| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4页 |
| 第1章 前言 | 第9-16页 |
| 第2章 材料和方法 | 第16-35页 |
| 2.1 材料 | 第16-23页 |
| 2.1.1 动物实验 | 第16页 |
| 2.1.2 抗体 | 第16-17页 |
| 2.1.3 蛋白免疫印迹 | 第17页 |
| 2.1.4 活性氧/氮自由基的检测 | 第17页 |
| 2.1.5 视网膜白细胞粘附的检测 | 第17页 |
| 2.1.6 视网膜血管渗漏的评估 | 第17页 |
| 2.1.7 定量RT-PCR | 第17-18页 |
| 2.1.8 免疫荧光 | 第18页 |
| 2.1.9 溶液配制 | 第18-21页 |
| 2.1.10 实验仪器 | 第21-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-34页 |
| 2.2.1 小鼠糖尿病模型的建立 | 第23页 |
| 2.2.2 小鼠心脏灌注 | 第23页 |
| 2.2.3 视网膜氧化应激的检测 | 第23-24页 |
| 2.2.4 Westernblotting检测 | 第24-29页 |
| 2.2.5 视网膜白细胞粘附的检测 | 第29页 |
| 2.2.6 视网膜血管渗漏的检测 | 第29-30页 |
| 2.2.7 定量RT-PCR | 第30-32页 |
| 2.2.8 免疫荧光 | 第32-34页 |
| 2.3 统计学分析 | 第34-35页 |
| 第3章 结果 | 第35-45页 |
| 3.1 喂食非诺贝特 16 周后各组小鼠的体重和血糖 | 第35页 |
| 3.2 非诺贝特抑制糖尿病小鼠视网膜内的氧化应激 | 第35-37页 |
| 3.3 非诺贝特诱导激活糖尿病小鼠视网膜M(?)ller细胞的Nrf2信号通路 | 第37-39页 |
| 3.4 非诺贝特阻止糖尿病小鼠视网膜内M(?)ller细胞的神经胶质过多生成 | 第39-40页 |
| 3.5 非诺贝特抑制视网膜NLRP3炎症小体的激活 | 第40-42页 |
| 3.6 非诺贝特减轻糖尿病小鼠视网膜的白细胞粘附和血管渗漏 | 第42-45页 |
| 第4章 讨论 | 第45-52页 |
| 第5章 结论 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-63页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第63-65页 |
| 综述 | 第65-73页 |
| 参考文献 | 第70-73页 |
