| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 1. 研究背景 | 第8-26页 |
| 1.1. 肾脏的结构和功能 | 第8-12页 |
| 1.1.1. 肾脏的结构 | 第8-12页 |
| 1.1.2. 肾脏的功能 | 第12页 |
| 1.2. 肾脏疾病 | 第12-14页 |
| 1.2.1. 慢性肾脏疾病(CKD) | 第12-13页 |
| 1.2.2. 急性肾脏疾病(AKD) | 第13-14页 |
| 1.3. 肾脏缺血再灌注损伤 | 第14-20页 |
| 1.3.1. 肾脏缺血再灌注损伤概述 | 第14-16页 |
| 1.3.2. 肾脏I/损伤的发病机制 | 第16-20页 |
| 1.3.3. 肾脏I/R损伤研究现状 | 第20页 |
| 1.4. APJ受体 | 第20-22页 |
| 1.4.1. APJ受体简介 | 第20页 |
| 1.4.2. APJ受体信号通路简介 | 第20-22页 |
| 1.5. APJ受体的内源配体 | 第22-25页 |
| 1.5.1. Apelin多肽简介 | 第22页 |
| 1.5.2. Apelin-APJ信号轴功能简介 | 第22-23页 |
| 1.5.3. ELABELA多肽简介 | 第23-24页 |
| 1.5.4. ELA-APJ信号轴功能简介 | 第24-25页 |
| 1.5.5. ELA其他功能简介 | 第25页 |
| 1.6. 本论文的研究内容 | 第25-26页 |
| 2. 实验材料和方法 | 第26-43页 |
| 2.1. 实验材料 | 第26-29页 |
| 2.1.1. 实验设备 | 第26页 |
| 2.1.2. 实验耗材与试剂 | 第26-29页 |
| 2.2. 实验中动物及细胞实验模型的建立和样品的处理 | 第29-34页 |
| 2.2.1. 动物实验及细胞实验中多肽药物的处理与保存 | 第29-30页 |
| 2.2.2. 小鼠肾脏I/R损伤模型的建立 | 第30-31页 |
| 2.2.3. 细胞培养及相关实验操作 | 第31-34页 |
| 2.2.4. 样品收取方法 | 第34页 |
| 2.3. 实验方法 | 第34-42页 |
| 2.3.1. ELA抗体的制备 | 第34-35页 |
| 2.3.2. 组织切片染色 | 第35-36页 |
| 2.3.3. TUNEL细胞凋亡检测 | 第36页 |
| 2.3.4. 细胞的免疫荧光染色 | 第36-37页 |
| 2.3.5. 逆转录聚合酶链式反应 | 第37-39页 |
| 2.3.6. 蛋白质印迹 | 第39-41页 |
| 2.3.7. 细胞活力检测(MTT实验) | 第41-42页 |
| 2.4. 数据分析方法 | 第42-43页 |
| 3. 实验结果 | 第43-54页 |
| 3.1. ELA抗体检测 | 第43-44页 |
| 3.2. Apela、Apln和Aplnr基因在小鼠组织中的表达水平 | 第44页 |
| 3.3. ELA在成年小鼠肾脏中的定位 | 第44-45页 |
| 3.4. 肾脏I/R损伤中ELA表达水平的变化 | 第45-46页 |
| 3.5. ELA肽对肾脏I/R损伤导致的肾功能下降、炎症反应和纤维化的影响 | 第46-49页 |
| 3.6. ELA32-GFP和ELA11-GFP抑制H/R损伤引起的炎症、DNA损伤 | 第49-50页 |
| 3.7. ELAs肽(300pM)不激活APJ受体而产生肾脏保护作用 | 第50-52页 |
| 3.8. ELA肽对肾脏I/R损伤的保护作用不同于Apelin | 第52-54页 |
| 4. 讨论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 硕士期间发表论文 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
