| 英文缩写词索引 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第一章 绪论 | 第16-20页 |
| 1.1 肝癌的发展现状 | 第16页 |
| 1.2 基因治疗 | 第16-17页 |
| 1.3 纳米药物载体 | 第17-18页 |
| 1.4 协同治疗 | 第18页 |
| 1.5 本课题的提出 | 第18-20页 |
| 第二章 半乳糖化壳聚糖-氟尿嘧啶/mi R-122 共传递纳米体系的制备与表征 | 第20-28页 |
| 2.1 主要材料与试剂 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-22页 |
| 2.2.1 大分子前药GC-FUA的合成 | 第20-21页 |
| 2.2.2 GC-FUA/ miR-122 共传递纳米体系的制备 | 第21页 |
| 2.2.3 共传递纳米体系的粒径与电位测定 | 第21-22页 |
| 2.2.4 透射电镜观察共传递纳米体系形貌 | 第22页 |
| 2.2.5 共传递纳米体系的DNA结合能力测试 | 第22页 |
| 2.2.6 共传递纳米体系的载药量与基因包裹量 | 第22页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第22-28页 |
| 2.3.1 共传递纳米体系的粒径和电位 | 第22-24页 |
| 2.3.2 共传递纳米体系透射电镜结果 | 第24页 |
| 2.3.3 共传递纳米体系的DNA结合能力检测结果 | 第24页 |
| 2.3.4 共传递纳米体系的载药量与基因包裹量 | 第24-25页 |
| 2.3.5 讨论 | 第25-28页 |
| 第三章 半乳糖化壳聚糖-氟尿嘧啶/mi R-122 共传递纳米体系生物相容性评价 | 第28-34页 |
| 3.1 主要材料、试剂与仪器 | 第28页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第28页 |
| 3.1.2 主要试剂与耗材 | 第28页 |
| 3.2 实验方法 | 第28-30页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第28-29页 |
| 3.2.2 miR-122 的转染 | 第29页 |
| 3.2.3 CCK8法检测共传递纳米体系对正常细胞的毒性作用 | 第29-30页 |
| 3.2.4 BSA吸附实验 | 第30页 |
| 3.2.5 溶血实验 | 第30页 |
| 3.2.6 数据统计学分析 | 第30页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第30-34页 |
| 3.3.1 共传递纳米体系对正常细胞的增殖抑制作用 | 第30-31页 |
| 3.3.2 BSA吸附实验 | 第31页 |
| 3.3.3 溶血实验 | 第31-32页 |
| 3.3.5 讨论 | 第32-34页 |
| 第四章 半乳糖化壳聚糖-氟尿嘧啶/mi R-122 共传递纳米体系体外抗肿瘤作用评价 | 第34-46页 |
| 4.1 主要材料与试剂 | 第34-35页 |
| 4.1.1 细胞株 | 第34页 |
| 4.1.2 主要试剂与耗材 | 第34-35页 |
| 4.2 实验方法 | 第35-38页 |
| 4.2.1 CCK8检测GC-FUA/miR-122 共传递纳米体系对肝癌细胞的增殖抑制作用 | 第35页 |
| 4.2.2 流式细胞术检测荧光强度 | 第35页 |
| 4.2.3 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第35-36页 |
| 4.2.4 迁移能力及侵袭能力检测 | 第36-37页 |
| 4.2.5 蛋白免疫印迹 | 第37-38页 |
| 4.2.6 数据统计学分析 | 第38页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第38-46页 |
| 4.3.1 转染条件的优化 | 第38-39页 |
| 4.3.2 GC-FUA/miR-122 共传递纳米体系对HepG2细胞的增殖抑制作用 | 第39-40页 |
| 4.3.3 GC-FUA/miR-122 共传递纳米体系对肿瘤细胞的凋亡影响 | 第40页 |
| 4.3.4 GC-FUA/miR-122共传递纳米体系对肿瘤细胞的迁移和侵袭能力的影响 | 第40-43页 |
| 4.3.5 Western Blot检测mi R-122 相关靶蛋白的表达 | 第43-44页 |
| 4.3.6 讨论 | 第44-46页 |
| 结论 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 综述 | 第52-78页 |
| References | 第66-78页 |
| 作者攻读学位期间的科研成果 | 第78-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
