| 中文摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 目录 | 第5-8页 |
| 中英文缩略词表 | 第8-9页 |
| 引言 | 第9-10页 |
| 第一部分 理论探讨部分 | 第10-18页 |
| 1.人体自稳态 | 第10-11页 |
| ·人体自稳态的含义 | 第10页 |
| ·人体自稳态的重要性 | 第10-11页 |
| 2.中医对人体自稳态的认识 | 第11页 |
| 3.肾精与自稳态的关系 | 第11-13页 |
| ·肾精功能的现代研究 | 第11-12页 |
| ·肾精理论研究 | 第11-12页 |
| ·当代中医对肾精的临床应用研究 | 第12页 |
| ·维持人体自稳态是肾精的重要功能之一 | 第12-13页 |
| 4.从辐射损伤模型入手研究自稳态破坏 | 第13-17页 |
| ·辐射损伤的病理表现 | 第13-14页 |
| ·辐射损伤致病的本质是自稳态的破坏 | 第14-15页 |
| ·辐射损伤致病的机制 | 第14页 |
| ·DNA与自稳态 | 第14-15页 |
| ·辐射损伤修复通路 | 第15-17页 |
| ·上游 | 第15-16页 |
| ·中间 | 第16页 |
| ·下游 | 第16-17页 |
| ·从辐射损伤角度研究自稳态机制 | 第17页 |
| 5.补肾填精法及代表方的组方依据 | 第17-18页 |
| ·补肾填精法的适应症和病机 | 第17页 |
| ·补肾填精法代表方的组方思路 | 第17-18页 |
| 第二部分 动物实验 | 第18-29页 |
| 1.材料 | 第18-19页 |
| ·实验动物与材料 | 第18-19页 |
| ·实验动物 | 第18页 |
| ·实验药品与试剂 | 第18-19页 |
| ·主要仪器 | 第19页 |
| 2.方法 | 第19-23页 |
| ·小鼠随机分组及给药途径 | 第19-20页 |
| ·药物的制备 | 第20页 |
| ·中药剂量的计算方法 | 第20页 |
| ·药物的制备过程 | 第20页 |
| ·模型的制备 | 第20页 |
| ·PCR实验标本的制备 | 第20页 |
| ·脾组织总RNA的提取 | 第20-21页 |
| ·反转录 | 第21页 |
| ·RT-PCR法 | 第21-22页 |
| ·引物的设计和合成 | 第21页 |
| ·PCR反应 | 第21-22页 |
| ·脾脏组织细胞免疫组化检测和染色 | 第22-23页 |
| ·脾脏组织免疫组化标本的制备 | 第22页 |
| ·石蜡包埋,切片,防脱片处理 | 第22页 |
| ·免疫组化染色步骤 | 第22-23页 |
| ·统计学方法 | 第23页 |
| 3.结果 | 第23-24页 |
| ·小鼠脾组织ATM,ATR基因表达结果 | 第23页 |
| ·小鼠脾脏细胞ATM基因表达结果分析 | 第23页 |
| ·小鼠脾脏细胞ATR基因表达结果分析 | 第23页 |
| ·小鼠脾组织相关蛋白的表达结果 | 第23-24页 |
| ·小鼠脾脏ATM,chk2,cdc25A,cdk2蛋白表达情况 | 第23-24页 |
| ·小鼠脾脏ATR,cdc25c,cdc2蛋白表达情况 | 第24页 |
| ·小鼠脾脏cdk2,c-abl,tert蛋白的表达情况 | 第24页 |
| 4.讨论 | 第24-27页 |
| ·对辐射损伤动物模型的选择 | 第24-25页 |
| ·补肾和补血 | 第25-26页 |
| ·小鼠脾脏的生理特性 | 第25页 |
| ·精血同源 | 第25-26页 |
| ·补肾填精方对ATR通路的作用 | 第26-27页 |
| ·补肾填精方有利于促进ATR基因的表达 | 第26页 |
| ·补肾填精方能激活ATR通路 | 第26-27页 |
| ·肾精能通过促进DNA的修复来维持人体自稳态 | 第27页 |
| ·DNA稳定是机体维持稳态的关键 | 第27页 |
| ·补肾填精法能激活ATR通路促进DNA修复 | 第27页 |
| 5.问题与展望 | 第27-29页 |
| ·药物服用时间方面 | 第27-28页 |
| ·对细胞周期的调控方面 | 第28页 |
| ·补肾填精方对DNA损伤修复的研究展望 | 第28-29页 |
| 结论 | 第29-30页 |
| 致谢 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-33页 |
| 中医自稳态的研究进展 | 第33-37页 |
| 参考文献 | 第35-37页 |
| 在读期间公开发表的学术论文、专著及科研成果 | 第37-38页 |
