首页--农业科学论文--园艺论文--菌类(食用菌)论文

华美牛肝菌多糖(BSF-X)的结构鉴定、生物活性及华美牛肝菌多糖(BSF-1)免疫活性机制的研究

摘要第8-10页
Abstract第10-11页
主要符号对照表第12-13页
第1章 前言第13-19页
    1.1 食药用真菌多糖的研究进展第13页
    1.2 真菌多糖粗提取与分离纯化的研究第13-14页
    1.3 真菌多糖的结构研究第14-15页
    1.4 真菌多糖生物活性及机制的研究第15-16页
        1.4.1 真菌多糖免疫调节活性的研究第15页
        1.4.2 真菌多糖抗肿瘤活性的研究第15页
        1.4.3 真菌多糖免疫调节活性机制的研究第15-16页
    1.5 华美牛肝菌的研究现状第16页
    1.6 本课题研究背景、意义及研究的主要内容第16-19页
        1.6.1 本课题的研究背景和意义第16-17页
        1.6.2 本课题的创新点第17页
        1.6.3 研究内容第17-19页
            1.6.3.1 华美牛肝菌多糖(BSF-X)提取、分离纯化的研究第17页
            1.6.3.2 华美牛肝菌多糖(BSF-X)化学结构的研究第17页
            1.6.3.3 华美牛肝菌多糖(BSF-X)生物活性的研究第17-18页
            1.6.3.4 华美牛肝菌多糖(BSF-1)免疫机制的初步研究第18-19页
第2章 华美牛肝菌多糖的提取与分离纯化第19-25页
    2.1 实验材料、试剂与仪器第19页
        2.1.1 实验材料第19页
        2.1.2 药品与试剂第19页
        2.1.3 主要仪器设备第19页
    2.2 实验方法第19-22页
        2.2.1 华美牛肝菌子实体粗多糖的提取第19-20页
            2.2.1.1 预处理第19页
            2.2.1.2 热水浸提法第19页
            2.2.1.3 浓缩第19-20页
            2.2.1.4 醇沉第20页
            2.2.1.5 蒸馏水溶解除蛋白质第20页
        2.2.2 粗多糖的分离纯化第20-21页
            2.2.2.1 药品的配制第20页
            2.2.2.2 DEAE-纤维素的活化第20页
            2.2.2.3 装柱与平衡第20-21页
            2.2.2.4 过柱与纯化多糖第21页
            2.2.2.5 高温浓缩洗脱收集液第21页
            2.2.2.6 DEAE-纤维素的再生第21页
            2.2.2.7 超净水透析第21页
        2.2.3 多糖的定性检测第21-22页
            2.2.3.1 定性检测的原理第21-22页
            2.2.3.2 实验操作第22页
        2.2.4 紫外光谱(UV)的检测第22页
        2.2.5 高效凝胶渗透色谱法分析(HPGPC)第22页
    2.3 实验结果与分析第22-24页
        2.3.1 华美牛肝菌子实体粗多糖的提取第22页
        2.3.2 华美牛肝菌子实体提取物粗多糖经DEAE-纤维素色谱法的初步分离纯化第22-23页
        2.3.3 样品的紫外光谱分析第23页
        2.3.4 高效凝胶渗透色谱法分析第23-24页
    2.4 本章小结第24-25页
第3章 华美牛肝菌多糖的结构研究第25-31页
    3.1 材料第25页
        3.1.1 实验材料第25页
        3.1.2 药品与试剂第25页
        3.1.3 主要仪器设备第25页
    3.2 实验方法第25-26页
        3.2.1 傅里叶红外光谱分析第25页
        3.2.2 甲基化-气质联用(GC-MS)法分析第25-26页
            3.2.2.1 多糖的甲基化第25页
            3.2.2.2 甲基化多糖的水解第25-26页
            3.2.2.3 水解后的甲基化多糖进行硅烷化衍生第26页
            3.2.2.4 衍生后的甲基化多糖进行GC-MS分析第26页
        3.2.3 核磁共振法分析第26页
    3.3 结果与讨论第26-30页
        3.3.1 BSF-X的红外光谱分析第26-27页
        3.3.2 甲基化-气质联用(GC-MS)法分析第27-28页
        3.3.3 BSF-X的NMR分析第28-30页
    3.4 本章小结第30-31页
第4章 华美牛肝菌多糖免疫调节活性及抗肿瘤活性的研究第31-49页
    4.1 实验材料、试剂与仪器第31-32页
        4.1.1 实验材料第31页
        4.1.2 主要试剂及配制方法第31页
        4.1.3 主要仪器设备第31-32页
    4.2 实验方法第32-36页
        4.2.1 细胞免疫活性实验第32-34页
            4.2.1.1 CCK-8 法检测BSF-X对三种免疫细胞(Raji、Jurkat以及Raw264.7细胞)增殖的影响第32页
            4.2.1.2 BSF-X对三种免疫细胞(Raji、Jurkat以及Raw264.7 细胞)细胞周期的影响第32-33页
            4.2.1.3 BSF-X对Raw264.7 细胞释放NO水平的影响第33页
            4.2.1.4 BSF-X对Raw264.7 细胞吞噬中性红能力的影响第33页
            4.2.1.5 BSF-X对Raw264.7 细胞释放细胞因子(TNF-α、IL-6 和IL-23)水平的影响第33-34页
                4.2.1.5.1 细胞上清液的收集第33-34页
                4.2.1.5.2 细胞因子(TNF-α、IL-6 和IL-23)标准品及其待测上清液的稀释第34页
                4.2.1.5.3 ELISA法检测细胞因子浓度第34页
        4.2.2 抗肿瘤活性研究第34-36页
            4.2.2.1 体外抗肿瘤活性研究(BSF-X对L929细胞的增殖抑制作用)第34-35页
            4.2.2.2 体内抗肿瘤活性研究第35-36页
        4.2.3 统计学处理第36页
    4.3 结果与讨论第36-48页
        4.3.1 BSF-X对B淋巴细胞的增殖作用第36-37页
        4.3.2 BSF-X对T淋巴细胞的增殖影响第37-38页
        4.3.3 BSF-X对巨噬细胞的增殖作用第38-39页
        4.3.4 BSF-X对B淋巴细胞的周期作用第39-40页
        4.3.5 BSF-X对T淋巴细胞的周期影响第40-41页
        4.3.6 BSF-X对Raw264.7 细胞的周期影响第41-42页
        4.3.7 BSF-X对巨噬细胞NO释放的影响第42-43页
        4.3.8 BSF-X对巨噬细胞吞噬中性红能力的影响第43-44页
        4.3.9 BSF-X对巨噬细胞分泌促炎症细胞因子(TNF-α,IL-6,IL-23)能力的影响第44-46页
        4.3.10 BSF-X体外对L929细胞的增殖抑制作用第46-47页
        4.3.11 BSF-X体内对S180小鼠肿瘤的抑制作用第47-48页
    4.4 本章小结第48-49页
第5章 华美牛肝菌多糖(BSF-1)免疫活性机制的初步研究第49-62页
    5.1 实验材料、试剂与仪器第49页
        5.1.1 实验材料第49页
        5.1.2 主要试剂及配制第49页
        5.1.3 主要仪器设备第49页
    5.2 实验方法第49-51页
        5.2.1 对B细胞、T细胞和Raw264.7 细胞刺激的药理评价第49页
        5.2.2 巨噬细胞吞噬测定第49页
        5.2.3 Raw264.7 细胞周期分析流式细胞术第49-50页
        5.2.4 RNA提取、实验室准备和测序第50页
        5.2.5 转录组数据分析第50页
        5.2.6 转录组的差异表达与定量分析第50页
        5.2.7 GO注释和GO/KEGG富集分析第50-51页
    5.3 结果分析与讨论第51-61页
        5.3.1 体外BSF-1 对B细胞增殖的影响第51页
        5.3.2 体外BSF-1 对T细胞增殖的影响第51-52页
        5.3.3 体外BSF-1 对巨噬细胞增殖的影响第52-53页
        5.3.4 巨噬细胞吞噬作用第53页
        5.3.5 BSF-1 对Raw264.7 细胞的细胞周期分布的影响第53-54页
        5.3.6 转录组测序和从头装配第54-56页
        5.3.7 两个Raw264.7 细胞组的转录组图谱第56-57页
        5.3.8 空白对照组和BSF-1 组之间的差异表达基因第57-58页
        5.3.9 差异表达基因的GO和KEGG富集分析第58-61页
    5.4 本章小结第61-62页
参考文献第62-68页
致谢第68-71页
在学期间的科研情况第71-72页

论文共72页,点击 下载论文
上一篇:四川23个桑树主栽品种分子标记的鉴定及其土壤微生物多样性的研究
下一篇:带荧光标签的SRAP标记(FSRAP)开发及在小麦遗传图谱中的应用