| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 主要符号说明 | 第12-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-24页 |
| 1 杨梅黄酮降糖作用机制研究现状 | 第13-18页 |
| 1.1 糖尿病研究背景 | 第13-14页 |
| 1.2 杨梅黄酮降血糖分子机制研究进展 | 第14-15页 |
| 1.3 其它植物成分降血糖作用的分子机制研究进展 | 第15-18页 |
| 1.3.1 调控胰岛素受体mRNA及蛋白的表达 | 第15-16页 |
| 1.3.2 增加葡萄糖转运蛋白的表达丰度 | 第16页 |
| 1.3.3 调节细胞凋亡相关基因及蛋白的表达 | 第16-17页 |
| 1.3.4 调节糖代谢途径中相关酶的活性 | 第17-18页 |
| 1.3.5 其它一些分子相关机制 | 第18页 |
| 1.3.5.1 抑制α-葡萄糖苷酶活性,延缓机体对糖的吸收 | 第18页 |
| 1.3.5.2 激活PPARs基因,改善胰岛素抵抗 | 第18页 |
| 2 竹叶黄酮降脂作用机制研究现状 | 第18-23页 |
| 2.1 高脂血症研究背景 | 第18-19页 |
| 2.2 竹叶黄酮降血脂作用机制的研究进展 | 第19-21页 |
| 2.2.1 直接调节血脂作用 | 第20页 |
| 2.2.2 通过改善外周环境从而达到降血脂的作用 | 第20-21页 |
| 2.3 黄酮类化合物降血脂作用分子水平研究进展 | 第21-23页 |
| 2.3.1 降低生脂基因ACC和FAS基因的表达 | 第21页 |
| 2.3.2 调节脂解基因HSL和TGH基因的表达水平 | 第21-22页 |
| 2.3.3 调节PPARs和SREBPs基因的转录和表达 | 第22-23页 |
| 3 论文研究的目的和意义 | 第23-24页 |
| 第二章 杨梅黄酮降血糖活性的研究 | 第24-35页 |
| 1 引言 | 第24页 |
| 2 实验材料与仪器 | 第24-25页 |
| 2.1 实验动物与试剂材料 | 第24-25页 |
| 2.2 实验仪器 | 第25页 |
| 3 实验方法 | 第25-28页 |
| 3.1 溶液的配置 | 第25-26页 |
| 3.2 四氧嘧啶型糖尿病大鼠模型的构建 | 第26页 |
| 3.3 实验大鼠的分组及给药方法 | 第26页 |
| 3.4 对糖尿病大鼠一般生活指标、体重的观察 | 第26页 |
| 3.5 空腹血糖的测定 | 第26-27页 |
| 3.6 大鼠糖耐量的试验 | 第27页 |
| 3.7 大鼠糖化血清蛋白(GSP)含量的测定 | 第27页 |
| 3.8 大鼠抗氧化性能的试验 | 第27页 |
| 3.9 大鼠血清胰岛素的测定 | 第27页 |
| 3.10 大鼠脏器重和脏体比的测定 | 第27页 |
| 3.11 统计学方法 | 第27-28页 |
| 4 实验结果与分析 | 第28-33页 |
| 4.1 杨梅黄酮对糖尿病大鼠一般生活指标及体重的影响 | 第28-29页 |
| 4.2 杨梅黄酮对糖尿病大鼠空腹血糖的影响 | 第29页 |
| 4.3 杨梅黄酮对糖尿病大鼠糖耐量的影响 | 第29-30页 |
| 4.4 杨梅黄酮对糖尿病大鼠糖化血清蛋白含量的影响 | 第30-31页 |
| 4.5 杨梅黄酮对糖尿病大鼠抗氧化性能的影响 | 第31页 |
| 4.6 杨梅黄酮对糖尿病大鼠血清胰岛素的影响 | 第31-32页 |
| 4.7 杨梅黄酮对糖尿病大鼠脏器重和脏体比的影响 | 第32-33页 |
| 5 讨论 | 第33-35页 |
| 5.1 糖尿病动物模型的复制 | 第33-34页 |
| 5.2 糖尿病大鼠模型的相关指标检测 | 第34-35页 |
| 第三章 杨梅黄酮降血糖的分子作用机制初步研究 | 第35-49页 |
| 1 引言 | 第35页 |
| 2 实验试剂和仪器 | 第35-36页 |
| 2.1 实验试剂 | 第35-36页 |
| 2.2 实验仪器 | 第36页 |
| 3 实验方法 | 第36-42页 |
| 3.1 大鼠肝脏、胰腺总RNA抽提和电泳检测 | 第36-38页 |
| 3.1.1 实验前的准备 | 第36-37页 |
| 3.1.2 组织总RNA抽提 | 第37页 |
| 3.1.3 总RNA纯度检验 | 第37页 |
| 3.1.4 琼脂糖凝胶电泳检测总RNA质量 | 第37-38页 |
| 3.2 第一链cDNA合成和检测 | 第38-39页 |
| 3.2.1 RT-PCR合成第一链cDNA | 第38页 |
| 3.2.2 PCR检测第一链cDNA质量 | 第38-39页 |
| 3.3 目的基因的聚合酶链式反应(PCR) | 第39-41页 |
| 3.3.1 引物设计 | 第39-40页 |
| 3.3.2 目的基因的PCR | 第40-41页 |
| 3.3.3 目的基因PCR产物检测 | 第41页 |
| 3.4 实时荧光定量PCR(Real-time PCR) | 第41-42页 |
| 3.5 数据处理和分析 | 第42页 |
| 4 结果与分析 | 第42-47页 |
| 4.1 RNA的质量检测结果 | 第42页 |
| 4.2 cDNA合成的检测结果 | 第42-43页 |
| 4.3 目的基因PCR结果分析 | 第43-44页 |
| 4.3.1 InsR基因的电泳图谱及分析 | 第43页 |
| 4.3.2 G-6-Pase基因的电泳图谱及分析 | 第43-44页 |
| 4.3.3 GLUT4基因的电图谱及分析 | 第44页 |
| 4.3.4 Bax和Bcl-2基因的电泳图谱及分析 | 第44页 |
| 4.4 Real-time PCR结果分析 | 第44-47页 |
| 4.4.1 InsR基因Real-time PCR的结果 | 第45页 |
| 4.4.2 G-6-Pase基因Real-time PCR的结果 | 第45-46页 |
| 4.4.3 GLUT4基因Real-time PCR的结果 | 第46页 |
| 4.4.4 Bax和Bel-2基因Real-time PCR的结果 | 第46-47页 |
| 5 讨论 | 第47-49页 |
| 5.1 电泳图谱与实验结果的关系 | 第47页 |
| 5.2 杨梅黄酮对目的基因表达调控研究 | 第47页 |
| 5.3 杨梅黄酮存在的作用分子机制探讨 | 第47-49页 |
| 第四章 竹叶黄酮降血脂作用的活性研究 | 第49-59页 |
| 1 引言 | 第49页 |
| 2 材料与方法 | 第49-51页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第49页 |
| 2.2 试验动物及饲料 | 第49-50页 |
| 2.3 实验分组及给药方式 | 第50页 |
| 2.4 高脂模型的建立 | 第50页 |
| 2.5 干预治疗 | 第50页 |
| 2.6 数据处理和结果判定 | 第50-51页 |
| 3 结果与分析 | 第51-57页 |
| 3.1 竹叶黄酮对大鼠生长、进食和体重的影响 | 第51-53页 |
| 3.2 竹叶黄酮对大鼠脏器指数和脏器的影响 | 第53-54页 |
| 3.3 竹叶黄酮对大鼠血清低密度脂蛋白胆固醇浓度的影响 | 第54页 |
| 3.4 竹叶黄酮对大鼠血清高密度脂蛋白胆固醇浓度的影响 | 第54-55页 |
| 3.5 竹叶黄酮对大鼠血清总胆固醇浓度的影响 | 第55-56页 |
| 3.6 竹叶黄酮对大鼠血清甘油三酯浓度的影响 | 第56页 |
| 3.7 竹叶黄酮对大鼠血糖水平和其它生化指标的影响 | 第56-57页 |
| 4 讨论 | 第57-59页 |
| 4.1 竹叶黄酮的降血脂功效 | 第57页 |
| 4.2 竹叶黄酮降血脂可能的作用机制 | 第57-59页 |
| 第五章 竹叶黄酮降血脂的分子作用机制初步研究 | 第59-70页 |
| 1 引言 | 第59页 |
| 2 实验试剂和仪器 | 第59页 |
| 2.1 实验试剂 | 第59页 |
| 2.2 实验仪器 | 第59页 |
| 3 实验方法 | 第59-65页 |
| 3.1 大鼠脂肪组织总RNA抽提和电泳检测 | 第59-61页 |
| 3.1.1 实验前的准备 | 第59-60页 |
| 3.1.2 组织总RNA抽提 | 第60页 |
| 3.1.3 总RNA纯度检验 | 第60页 |
| 3.1.4 琼脂糖凝胶电泳检测总RNA质量 | 第60-61页 |
| 3.2 第一链cDNA合成和检测 | 第61-62页 |
| 3.2.1 RT-PCR合成第一链cDNA | 第61页 |
| 3.2.2 PCR检测第一链cDNA质量 | 第61-62页 |
| 3.3 目的基因的聚合酶链式反应(PCR) | 第62-64页 |
| 3.3.1 引物设计 | 第62页 |
| 3.3.2 目的基因的PCR | 第62-64页 |
| 3.3.3 目的基因PCR产物检测 | 第64页 |
| 3.4 实时荧光定量PCR(Real-time PCR) | 第64-65页 |
| 3.5 数据处理和分析 | 第65页 |
| 4 结果与分析 | 第65-68页 |
| 4.1 RNA的质量检测结果 | 第65页 |
| 4.2 cDNA合成的检测结果 | 第65-66页 |
| 4.3 目的基因PCR结果分析 | 第66-67页 |
| 4.3.1 HSL基因的电泳图谱及分析 | 第66页 |
| 4.3.2 FAS基因的电泳图谱及分析 | 第66-67页 |
| 4.3.3 PPARγ基因的电泳图谱及分析 | 第67页 |
| 4.4 Real-time PCR结果分析 | 第67-68页 |
| 4.4.1 HSL基因Real-time PCR的结果 | 第67-68页 |
| 4.4.2 FAS基因Real-time PCR的结果 | 第68页 |
| 4.4.3 PPARγ基因Real-time PCR的结果 | 第68页 |
| 5 讨论 | 第68-70页 |
| 5.1 竹叶黄酮对目的基因表达水平的影响 | 第68-69页 |
| 5.2 竹叶黄酮降脂作用分子机制探讨 | 第69-70页 |
| 第六章 结论与展望 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第82页 |
