| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-16页 |
| 第2章 文献综述 | 第16-20页 |
| 2.1 骨形成机理 | 第16-17页 |
| 2.2 miRNA对成骨细胞调控的研究进展 | 第17-18页 |
| 2.2.1 miRNA概述 | 第17页 |
| 2.2.2 miRNA对成骨细胞的调控 | 第17-18页 |
| 2.3 miRNA转运系统 | 第18-20页 |
| 2.3.1 miRNA的转运 | 第18-19页 |
| 2.3.2 miRNA与传输载体 | 第19-20页 |
| 第3章 实验研究 | 第20-32页 |
| 3.1 实验试剂和仪器 | 第20-22页 |
| 3.1.1 主要试剂与材料 | 第20页 |
| 3.1.2 主要仪器与设备 | 第20-21页 |
| 3.1.3 试剂配制 | 第21-22页 |
| 3.2 实验方法 | 第22-32页 |
| 3.2.1 MG63的培养 | 第22-23页 |
| 3.2.2 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物粒径及电位的检测 | 第23页 |
| 3.2.3 琼脂糖凝胶电泳实验 | 第23页 |
| 3.2.4 细胞转染效率检测实验 | 第23-24页 |
| 3.2.5 RT-PCR检测转染MG63细胞后miR-34a的表达 | 第24-27页 |
| 3.2.6 MTT法检测N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物对细胞增殖的影响 | 第27页 |
| 3.2.7 流式细胞术检测N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物对细胞周期的影响 | 第27-28页 |
| 3.2.8 流式细胞术检测N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物对细胞凋亡的影响 | 第28页 |
| 3.2.9 RT-PCR检测MG63细胞中成骨相关基因表达水平 | 第28-30页 |
| 3.2.10 Western blotting检测MG63细胞中成骨相关基因蛋白表达水平 | 第30-31页 |
| 3.2.11 统计学分析 | 第31-32页 |
| 第4章 实验结果 | 第32-39页 |
| 4.1 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物的表征 | 第32页 |
| 4.2 琼脂糖凝胶电泳实验 | 第32-33页 |
| 4.3 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物在细胞内的转染效率 | 第33-34页 |
| 4.4 RT-PCR检测转染后miR-34a mRNA表达水平 | 第34页 |
| 4.5 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物对MG63细胞增殖的影响 | 第34-35页 |
| 4.6 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物对MG63细胞周期的影响 | 第35-36页 |
| 4.7 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物对MG63细胞凋亡的影响 | 第36页 |
| 4.8 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物对MG63成骨分化的影响 | 第36-39页 |
| 4.8.1 RT-PCR检测MG63细胞中成骨相关因子基因表达水平 | 第36-37页 |
| 4.8.2 Western blot检测MG63细胞中成骨相关基因蛋白表达水平 | 第37-39页 |
| 第5章 讨论 | 第39-43页 |
| 5.1 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物转染效率 | 第40页 |
| 5.2 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物抑制细胞增殖 | 第40-41页 |
| 5.3 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物促进MG63细胞成骨分化 | 第41-43页 |
| 5.3.1 特异性成骨相关因子 | 第41页 |
| 5.3.2 N-Ac-L-Leu-PEI/miR-34a复合物促进MG63细胞成骨分化 | 第41-43页 |
| 第6章 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-51页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第51-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
