| 英文缩略词 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 前言 | 第13-17页 |
| 1. 材料和方法 | 第17-51页 |
| 1.1. 实验材料和试剂配制 | 第17-20页 |
| 1.2. 方法 | 第20-50页 |
| 1.2.1. HCV RNA新的引物设计策略的制定 | 第20-31页 |
| 1.2.1.1. 各亚型保守区分析 | 第20-22页 |
| 1.2.1.2. 5'-UTR二级结构分析 | 第22-23页 |
| 1.2.1.3. HCV RNA降解机制分析 | 第23-30页 |
| 1.2.1.4. 新的引物设计策略的内容 | 第30-31页 |
| 1.2.2. HCV RNA新的检测体系的建立 | 第31-36页 |
| 1.2.2.1. 核酸的提取 | 第31-33页 |
| 1.2.2.2. 核酸扩增体系和扩增参数 | 第33-34页 |
| 1.2.2.3. 经验条件下初步检测 | 第34-36页 |
| 1.2.3. HCV RNA检测体系的优化 | 第36-41页 |
| 1.2.3.1. 检测体系优化的目的 | 第36页 |
| 1.2.3.2. 核酸提取柱的选择 | 第36-37页 |
| 1.2.3.3. 核酸扩增体系和扩增参数的选择 | 第37-40页 |
| 1.2.3.4. 核酸检测定量 | 第40-41页 |
| 1.2.4. HCV RNA检测体系的方法学性能评价 | 第41-45页 |
| 1.2.4.1. 最低检出限 | 第41页 |
| 1.2.4.2. 重复性 | 第41-42页 |
| 1.2.4.3. 特异性 | 第42页 |
| 1.2.4.4. 线性 | 第42页 |
| 1.2.4.5. 一致性 | 第42-45页 |
| 1.2.5. HCV RNA新的引物设计策略的正确性验证 | 第45-47页 |
| 1.2.5.1. 多对扩增引物的选择 | 第45-46页 |
| 1.2.5.2. RNA稳定时引物设计长度和位置的比较 | 第46页 |
| 1.2.5.3. RNA不稳定时引物设计长度和位置的比较 | 第46-47页 |
| 1.2.6. HCV RNA新的检测方法的临床实用性验证 | 第47-50页 |
| 1.2.6.1. 临床样本的处理 | 第47页 |
| 1.2.6.2. 不同商品化试剂盒的核酸提取扩增 | 第47-50页 |
| 1.2.6.3. 本方法与商品化试剂盒的比较 | 第50页 |
| 1.3. 统计学分析 | 第50-51页 |
| 2. 结果 | 第51-88页 |
| 2.1. HCV RNA新的检测体系的建立 | 第51-54页 |
| 2.1.1. 未优化体系经验条件下初测 | 第53-54页 |
| 2.2. HCV RNA检测体系的优化 | 第54-58页 |
| 2.2.1. 最佳核酸提取柱的确定 | 第54-55页 |
| 2.2.2. 最佳核酸扩增体系和循环参数的确定 | 第55-58页 |
| 2.3. HCV RNA检测体系的方法学性能评价 | 第58-66页 |
| 2.3.1. 最低检出限 | 第58-60页 |
| 2.3.2. 重复性 | 第60-62页 |
| 2.3.3. 特异性 | 第62页 |
| 2.3.4. 线性 | 第62-64页 |
| 2.3.5. 一致性 | 第64-66页 |
| 2.4. HCV RNA新的引物设计策略的正确性验证 | 第66-75页 |
| 2.4.1. 多对扩增引物的长度比较和位置分布 | 第66-69页 |
| 2.4.2. RNA稳定时引物设计长度和位置的影响 | 第69-72页 |
| 2.4.3. RNA不稳定时引物设计长度和位置的影响 | 第72-75页 |
| 2.5. HCV RNA新的检测方法的临床实用性验证 | 第75-81页 |
| 2.5.1. RNA稳定时与商品化试剂盒比较 | 第75-78页 |
| 2.5.2. RNA不稳定时与商品化试剂盒比较 | 第78-81页 |
| 3. 讨论 | 第81-88页 |
| 参考文献 | 第88-94页 |
| 论文综述——HCV RNA降解机制和意义的研究现状 | 第94-122页 |
| 参考文献 | 第116-122页 |
| 附录1. 42名丙型肝炎患者初始检测信息表 | 第122-124页 |
| 附录2. HCV各亚型血清盘详细信息 | 第124-127页 |
| 附录3. 各亚型在GENBANK的详细信息 | 第127-133页 |
| 附录4. 根据各基因型序列的保守区分析的候选引物 | 第133-137页 |
| 致谢 | 第137-139页 |
| 个人简介 | 第139页 |
