中英文缩略词对照 | 第6-7页 |
中文摘要 | 第7-10页 |
英文摘要 | 第10-12页 |
1.前言 | 第13-15页 |
2.实验材料 | 第15-18页 |
2.1 肿瘤细胞株 | 第15页 |
2.2 药物与试剂 | 第15-16页 |
2.3 主要溶液配制 | 第16-18页 |
2.4 仪器与设备 | 第18页 |
2.5 图像软件分析 | 第18页 |
3.实验方法 | 第18-28页 |
3.1 细胞培养 | 第18-19页 |
3.2 MTT实验检测细胞的增殖 | 第19-20页 |
3.3 改良的TRAP法检测端粒酶活性 | 第20-21页 |
3.4 流式细胞术检测细胞周期 | 第21页 |
3.5 Q-PCR方法检测肿瘤细胞中mRNA的表达水平 | 第21-24页 |
3.5.1 细胞总RNA提取 | 第22页 |
3.5.2 RNA的定量 | 第22页 |
3.5.3 逆转录过程 | 第22-23页 |
3.5.4 Q-PCR反应 | 第23-24页 |
3.6 Western-blot方法检测肿瘤细胞中蛋白的表达 | 第24-26页 |
3.6.1 细胞蛋白的提取 | 第24页 |
3.6.2 BCA法蛋白定量 | 第24-25页 |
3.6.3 SDS-PAGE凝胶电泳法 | 第25页 |
3.6.4 电转移 | 第25-26页 |
3.6.5 免疫印迹 | 第26页 |
3.6.6 凝胶图象分析 | 第26页 |
3.7 pCI-neo-hTERT质粒瞬时转染进入SMMC-7721肝癌细胞 | 第26-28页 |
3.7.1 抽提质粒 | 第26-27页 |
3.7.2 pCI-neo-hTERT质粒转染 | 第27-28页 |
4.数据处理 | 第28页 |
5.实验结果 | 第28-42页 |
5.1 小分子化合物的设计思路和合成 | 第28-34页 |
5.1.1 小分子化合物的设计思路 | 第28-29页 |
5.1.2 小分子化合物的合成 | 第29-30页 |
5.1.3 目标化合物的结构表征及原始图谱 | 第30-34页 |
5.2 抗癌活性的筛选 | 第34-35页 |
5.3 化合物 4a对人肝癌细胞株SMMC-7721细胞周期的影响 | 第35-37页 |
5.4 化合物 4a对hTERT的作用研究 | 第37-39页 |
5.4.1 计算机辅助药物分子模型设计 | 第37页 |
5.4.2 化合物 4a对端粒酶活性的影响 | 第37-38页 |
5.4.3 化合物 4a对hTERT的蛋白水平的影响 | 第38-39页 |
5.5 化合物 4a抑制人肝癌细胞株SMMC-7721细胞中P65、IL-6 以及TNF-a的表达 | 第39-40页 |
5.6 化合物 4a调控hTERT对人肝癌细胞株SMMC-7721中NF-κb/P65信号通路的影响 | 第40-42页 |
6.讨论 | 第42-45页 |
7.小结 | 第45-46页 |
8 参考文献 | 第46-49页 |
个人简历 | 第49-52页 |
致谢 | 第52-54页 |
综述 | 第54-67页 |
参考文献 | 第63-67页 |