| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 缩略词表 | 第8-11页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-28页 |
| 1.1 前言 | 第11页 |
| 1.2 肿瘤免疫 | 第11-13页 |
| 1.2.1 肿瘤免疫相关背景 | 第11-12页 |
| 1.2.2 抗体和肿瘤抗原 | 第12页 |
| 1.2.3 抗肿瘤的免疫效应机制 | 第12-13页 |
| 1.2.3.1 肿瘤细胞免疫机制 | 第13页 |
| 1.2.3.2 肿瘤的体液免疫机制 | 第13页 |
| 1.3 肿瘤的免疫治疗方法 | 第13-14页 |
| 1.3.1 肿瘤的主动免疫治疗 | 第13-14页 |
| 1.3.2 肿瘤的被动免疫治疗 | 第14页 |
| 1.4 糖与肿瘤免疫 | 第14-20页 |
| 1.4.1 肿瘤糖抗原与免疫 | 第14-16页 |
| 1.4.2 人血清中的天然糖抗体 | 第16-17页 |
| 1.4.3 Anti-Gal与肿瘤免疫 | 第17-18页 |
| 1.4.3.1 体外使肿瘤细胞带上α-Gal抗原表位 | 第17-18页 |
| 1.4.3.2 原位使肿瘤细胞带上α-Gal抗原表位 | 第18页 |
| 1.4.4 Anti-Rha与肿瘤免疫 | 第18-20页 |
| 1.4.4.1 L-Rhamnose简介 | 第18-19页 |
| 1.4.4.2 Anti-L-Rhamnose研究现状 | 第19-20页 |
| 1.5 代谢糖工程 | 第20-28页 |
| 1.5.1 代谢糖工程的简介及背景 | 第20-21页 |
| 1.5.2 代谢糖工程的应用 | 第21-28页 |
| 第2章 人类血清中的天然Rha抗体可以对标记有Rha的细胞进行杀伤 | 第28-44页 |
| 2.1 引言 | 第28-29页 |
| 2.2 材料 | 第29-30页 |
| 2.2.1 细胞系 | 第29页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第29-30页 |
| 2.2.3 常见溶液及缓冲液配制 | 第30页 |
| 2.3 实验方法 | 第30-34页 |
| 2.3.1 炔基Rha的合成 | 第30-31页 |
| 2.3.2 细胞培养和细胞传代 | 第31页 |
| 2.3.3 细胞冻存 | 第31页 |
| 2.3.4 冻存细胞的复苏 | 第31-32页 |
| 2.3.5 Alexa Flour 488荧光标记细胞表面叠氮 | 第32页 |
| 2.3.6 炔基鼠李糖标记HeLa细胞 | 第32页 |
| 2.3.7 免疫荧光检测HeLa表面Rha的标记 | 第32-33页 |
| 2.3.8 人血清处理Rha标记的HeLa细胞 | 第33页 |
| 2.3.9 CellTiter-Glo荧光细胞活性检测 | 第33-34页 |
| 2.4 实验思路 | 第34-35页 |
| 2.5 实验结果 | 第35-42页 |
| 2.5.1 ManNAz可以通过细胞内代谢最终表达在细胞膜表面 | 第35-39页 |
| 2.5.1.1 ManNAz通过细胞内的唾液酸合成途径在肿瘤细胞膜表面表达 | 第35-36页 |
| 2.5.1.2 ManNAz在细胞膜表面的表达量与其本身浓度呈正相关 | 第36-37页 |
| 2.5.1.3 ManNAz在细胞膜表面表达与Ac4ManNAz处理时间的关系 | 第37-38页 |
| 2.5.1.4 检测Hela细胞表面标记的Rha | 第38-39页 |
| 2.5.2 人血清中的天然Rha抗体对标记有Rha的肿瘤细胞具有杀伤作用 | 第39-42页 |
| 2.5.2.1 人血清处理浓度与补体介导的细胞杀伤的关系 | 第39-40页 |
| 2.5.2.2 Ac4ManNAz的浓度与补体介导的细胞杀伤的关系 | 第40-42页 |
| 2.6 总结与讨论 | 第42-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-56页 |
