| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 英文缩写对照表 | 第11-12页 |
| 第一章 综述 | 第12-24页 |
| 1.1 伪狂犬病概述 | 第12-13页 |
| 1.2 伪狂犬病毒的分子特性 | 第13-17页 |
| 1.3 病毒的衣壳蛋白及主要结构功能 | 第17页 |
| 1.4 病毒的被膜蛋白及主要结构功能 | 第17页 |
| 1.5 病毒的囊膜蛋白及主要结构功能 | 第17-19页 |
| 1.5.1 必需囊膜蛋白 | 第18-19页 |
| 1.5.2 非必需糖蛋白 | 第19页 |
| 1.6 针对PRV的药物研究进展 | 第19-20页 |
| 1.7 PRV的感染、吸附、侵入及复制过程 | 第20页 |
| 1.8 PRV的研究进展 | 第20-21页 |
| 1.9 PRV诊断方法的研究进展 | 第21页 |
| 1.10 猪伪狂犬临床诊断及病理学变化 | 第21-22页 |
| 1.11 我国伪狂犬疫苗的研究动态 | 第22-23页 |
| 1.12 本研究的目的和意义 | 第23-24页 |
| 第二章 两株PRV全序列测序及位点变化分析 | 第24-58页 |
| 2.1 前言 | 第24页 |
| 2.2 实验材料与主要试剂 | 第24-25页 |
| 2.2.1 组织材料 | 第24-25页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第25页 |
| 2.3 主要仪器设备 | 第25页 |
| 2.4 试剂配制 | 第25-27页 |
| 2.4.1 20X PBS(磷酸盐缓冲液)的配制 | 第25-26页 |
| 2.4.2 DMEM和2X MEM培养液的制备 | 第26页 |
| 2.4.3 空斑检测用染色液 | 第26页 |
| 2.4.4 蔗糖梯度溶液的配制 | 第26-27页 |
| 2.5 实验方法与步骤 | 第27-30页 |
| 2.5.1 引物设计 | 第27页 |
| 2.5.2 组织样品的处理和病毒DNA提取 | 第27页 |
| 2.5.3 Vero细胞的复苏与培养 | 第27-28页 |
| 2.5.4 病毒分离培养 | 第28页 |
| 2.5.5 病毒空斑纯化 | 第28-29页 |
| 2.5.6 病毒基因组DNA的提取及纯化 | 第29页 |
| 2.5.7 病毒基因组高通量测序及拼接 | 第29页 |
| 2.5.8 基因同源性和进化树分析 | 第29-30页 |
| 2.5.9 重组分析方法 | 第30页 |
| 2.6 实验结果与分析 | 第30-55页 |
| 2.6.1 病毒检测及鉴定结果 | 第30-32页 |
| 2.6.2 本实验室近年来分离得到的PRV的主要毒力基因情况 | 第32-33页 |
| 2.6.3 病毒空斑纯化结果 | 第33-34页 |
| 2.6.4 病毒基因组DNA的测序结果及分析 | 第34-44页 |
| 2.6.5 基因组序列重组分析 | 第44-50页 |
| 2.6.6 PRV感染和毒力相关蛋白的变异特征 | 第50-55页 |
| 2.7 讨论 | 第55-57页 |
| 2.8 本章小结 | 第57-58页 |
| 第三章 不同PRV毒株毒力及对小白鼠致病性比较研究 | 第58-71页 |
| 3.1 前言 | 第58页 |
| 3.2 实验检测材料与主要试剂 | 第58-59页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第58页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第58-59页 |
| 3.3 主要仪器设备 | 第59页 |
| 3.4 实验方法 | 第59-60页 |
| 3.4.1 病毒TCID_(50)测定 | 第59页 |
| 3.4.2 多步生长曲线方法 | 第59-60页 |
| 3.4.3 小鼠实验方案 | 第60页 |
| 3.4.4 小鼠脑组织中PRV含量的测定 | 第60页 |
| 3.4.5 数据分析 | 第60页 |
| 3.5 实验结果 | 第60-67页 |
| 3.5.1 TCID_(50)测定结果 | 第60-61页 |
| 3.5.2 空斑结果 | 第61-62页 |
| 3.5.3 多步生长曲线结果 | 第62页 |
| 3.5.4 小鼠实验结果 | 第62-66页 |
| 3.5.5 小鼠脑组织病毒含量结果 | 第66-67页 |
| 3.6 讨论 | 第67-70页 |
| 3.7 本章小结 | 第70-71页 |
| 全文总结 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第80-81页 |
| 附录表 | 第81-93页 |