| 前言 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第14-16页 |
| 第1章 文献综述 | 第16-26页 |
| 1.1 缝隙连接Cx43半通道 | 第16-19页 |
| 1.1.1 Cx43半通道结构 | 第16-17页 |
| 1.1.2 Cx43半通道的合成与分布 | 第17-18页 |
| 1.1.3 Cx43半通道功能 | 第18-19页 |
| 1.1.4 Cx43半通道干预剂 | 第19页 |
| 1.2 Cx43半通道与缺血性疾病 | 第19-20页 |
| 1.3 线粒体Cx43半通道功能及与疾病的关系 | 第20-21页 |
| 1.4 线粒体Cx43与mitoK_(ATP)通道 | 第21-22页 |
| 1.5 线粒体Cx43与PKC | 第22-23页 |
| 1.6 线粒体Cx43与PKC、mitoK_(ATP)通道 | 第23-24页 |
| 1.7 展望 | 第24-26页 |
| 第2章 脑缺血再灌注损伤体内、体外模型的建立及mtCx43表达的变化 | 第26-58页 |
| 2.1 前言 | 第26页 |
| 2.2 材料与方法 | 第26-41页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第26-29页 |
| 2.2.2 试剂配制 | 第29-32页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第32-41页 |
| 2.2.4 统计学分析 | 第41页 |
| 2.3 实验结果 | 第41-55页 |
| 2.3.1 大鼠星形胶质细胞培养体系的建立 | 第41-42页 |
| 2.3.2 大鼠星形胶质细胞OGD模型的建立 | 第42-43页 |
| 2.3.3 TUNEL染色检测星形胶质细胞凋亡情况 | 第43-45页 |
| 2.3.4 电镜观察细胞线粒体结构 | 第45-47页 |
| 2.3.5 激光共聚焦显微镜观察Cx43和线粒体的分布 | 第47-49页 |
| 2.3.6 大鼠MCAO模型梗死面积及神经功能学评分 | 第49-50页 |
| 2.3.7 电子显微镜下观察神经血管单元及线粒体形态改变 | 第50-52页 |
| 2.3.8 大鼠脑组织凋亡情况 | 第52-54页 |
| 2.3.9 大鼠脑组织线粒体提取及mtCx43表达含量 | 第54-55页 |
| 2.4 讨论 | 第55-57页 |
| 2.5 结论 | 第57-58页 |
| 第3章 MitoK_(ATP)通道在大鼠脑缺血再灌注损伤中的作用及对mtCx43的调控 | 第58-80页 |
| 3.1 前言 | 第58页 |
| 3.2 材料与方法 | 第58-63页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第58-59页 |
| 3.2.2 试剂配制 | 第59页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第59-63页 |
| 3.2.4 统计学分析 | 第63页 |
| 3.3 实验结果 | 第63-77页 |
| 3.3.1 mitoK_(ATP)通道干预剂合理药物浓度 | 第63-65页 |
| 3.3.2 mitoK_(ATP)通道干预剂对细胞相对存活率的影响 | 第65页 |
| 3.3.3 mitoK_(ATP)通道干预剂对星形胶质细胞凋亡的影响 | 第65-67页 |
| 3.3.4 mitoK_(ATP)通道干预剂对细胞线粒体结构的影响 | 第67-68页 |
| 3.3.5 流式细胞仪检测细胞线粒体膜电位 | 第68-70页 |
| 3.3.6 mitoK_(ATP)通道在大鼠脑梗死面积及神经功能学评分中的作用 | 第70-71页 |
| 3.3.7 mitoK_(ATP)通道干预剂对神经血管单元及线粒体形态的影响 | 第71-73页 |
| 3.3.8 mitoK_(ATP)通道干预剂对脑组织细胞凋亡情况影响 | 第73-75页 |
| 3.3.9 mitoK_(ATP)通道干预剂对大鼠脑组织SOD活性及MDA含量的影响 | 第75-76页 |
| 3.3.10 大鼠脑组织线粒体提取及mtCx43表达含量 | 第76-77页 |
| 3.4 讨论 | 第77-79页 |
| 3.5 结论 | 第79-80页 |
| 第4章 MitoK_(ATP)通道调控mtCx43保护缺血再灌注损伤的作用机制 | 第80-90页 |
| 4.1 前言 | 第80页 |
| 4.2 实验材料和方法 | 第80-81页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第80-81页 |
| 4.2.2 实验试剂配置 | 第81页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第81页 |
| 4.2.4 统计方法 | 第81页 |
| 4.3 实验结果 | 第81-86页 |
| 4.3.1 组织TUNEL染色 | 第81-83页 |
| 4.3.2 组织SOD活力、MDA含量检测 | 第83页 |
| 4.3.3 Western Blot检测总蛋白及线粒体蛋白水平表达 | 第83-86页 |
| 4.4 讨论 | 第86-88页 |
| 4.5 结论 | 第88-90页 |
| 第5章 丹参多酚酸调控mtCx43保护脑组织缺血性再灌损伤体内、外研究 | 第90-102页 |
| 5.1 前言 | 第90页 |
| 5.2 试验材料和方法 | 第90-91页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第90页 |
| 5.2.2 实验试剂配置 | 第90页 |
| 5.2.3 实验方法 | 第90-91页 |
| 5.2.4 统计方法 | 第91页 |
| 5.3 实验结果 | 第91-100页 |
| 5.3.1 丹参多酚酸对星形胶质细胞OGD损伤的有效保护药物浓度 | 第91-92页 |
| 5.3.2 丹参多酚酸对细胞OGD后凋亡的影响 | 第92-94页 |
| 5.3.3 丹参多酚酸对大鼠MCAO后脑组织梗死面积及神经功能学评分的影响 | 第94-95页 |
| 5.3.4 电子显微镜下观察神经血管单元及线粒体形态改变 | 第95-97页 |
| 5.3.5 丹参多酚酸对大鼠脑缺血再灌注损伤后凋亡的影响 | 第97-99页 |
| 5.3.6 丹参多酚酸对大鼠缺血再灌注损伤后SOD活力、MDA含量的影响 | 第99页 |
| 5.3.7 大鼠脑组织线粒体提取及mtCx43表达含量 | 第99-100页 |
| 5.4 讨论 | 第100-101页 |
| 5.5 结论 | 第101-102页 |
| 第6章 结论 | 第102-104页 |
| 第7章 主要创新点与展望 | 第104-106页 |
| 参考文献 | 第106-116页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第116-117页 |
| 致谢 | 第117页 |
