| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-28页 |
| ·胞外聚合物概述 | 第13-15页 |
| ·胞外聚合物的来源及其性质 | 第13-14页 |
| ·胞外聚合物的提取方法 | 第14-15页 |
| ·胞外聚合物的分析方法 | 第15页 |
| ·PAHs污染环境的生物修复 | 第15-22页 |
| ·生物修复技术 | 第15-16页 |
| ·降解PAHs的微生物 | 第16-18页 |
| ·微生物降解多环芳烃的机理 | 第18-22页 |
| ·微生物降解多环芳烃的分子生物学水平研究 | 第22-26页 |
| ·微生物降解多环芳烃的基因组学研究 | 第22-25页 |
| ·微生物降解多环芳烃的蛋白质组学研究 | 第25-26页 |
| ·研究目的、意义及主要内容 | 第26-28页 |
| ·研究目的、意义 | 第26-27页 |
| ·研究内容 | 第27-28页 |
| 第2章 微生物及其EPS对PAHs降解能力研究 | 第28-37页 |
| ·实验材料与方法 | 第28-30页 |
| ·实验试剂 | 第28页 |
| ·实验仪器 | 第28页 |
| ·实验用菌种 | 第28-29页 |
| ·实验用相关培养基 | 第29页 |
| ·微生物培养 | 第29页 |
| ·加热法提取高效降解菌EPS | 第29-30页 |
| ·培养基中PAHs的萃取方法 | 第30页 |
| ·PAHs的测定方法 | 第30页 |
| ·结果与讨论 | 第30-35页 |
| ·微生物对PAHs降解能力的研究 | 第30-32页 |
| ·微生物EPS对PAHs降解能力的研究 | 第32-34页 |
| ·微生物EPS对微生物降解多环芳烃的促进作用 | 第34-35页 |
| ·小结 | 第35-37页 |
| 第3章 PAHS诱导微生物EPS的特性研究 | 第37-64页 |
| ·试验材料与方法 | 第37-42页 |
| ·试验试剂 | 第37页 |
| ·实验仪器 | 第37页 |
| ·微生物EPS的制备 | 第37页 |
| ·EPS主要成分含量测定 | 第37-41页 |
| ·EPS形貌特征分析 | 第41-42页 |
| ·EPS三维荧光光谱分析 | 第42页 |
| ·结果与讨论 | 第42-62页 |
| ·PAHs诱导下微生物EPS主要成份分析 | 第42-47页 |
| ·不同浓度芘和苯并[a]芘诱导下液体培养微生物EPS的形貌特征分析 | 第47-55页 |
| ·不同浓度芘和苯并[a]芘诱导下液体培养微生物EPS的三维荧光光谱检测结果 | 第55-62页 |
| ·小结 | 第62-64页 |
| 第4章 微生物EPS在多环芳烃降解酶释放过程中的作用 | 第64-80页 |
| ·试验材料与方法 | 第64-69页 |
| ·试验试剂 | 第64页 |
| ·实验仪器 | 第64页 |
| ·分支杆菌DNA的提取 | 第64页 |
| ·Real-time PCR | 第64-66页 |
| ·普通PCR | 第66-67页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第67页 |
| ·变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第67-68页 |
| ·克隆、测序和比对 | 第68页 |
| ·分支杆菌蛋白提取 | 第68-69页 |
| ·SDS-PAGE电泳 | 第69页 |
| ·蛋白质鉴定 | 第69页 |
| ·结果与讨论 | 第69-78页 |
| ·PCR产物琼脂糖凝胶电泳图 | 第69页 |
| ·变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第69-71页 |
| ·培养条件对GP/ rDNA的影响 | 第71-72页 |
| ·分支杆菌EPS对GP/16S rDNA的影响 | 第72-74页 |
| ·SDS-PAGE电泳分离差异蛋白 | 第74页 |
| ·蛋白质谱鉴定结果 | 第74-78页 |
| ·小结 | 第78-80页 |
| 结论 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-94页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文和获得的科研成果 | 第94-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |
