缩略语 | 第1-6页 |
中文摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-11页 |
引言 | 第11-13页 |
第一部分 蜈蚣酶解法提取工艺优化 | 第13-26页 |
1 材料与方法 | 第13-19页 |
·细胞株来源 | 第13页 |
·药物及试剂 | 第13-14页 |
·主要仪器设备 | 第14-15页 |
·实验方法 | 第15-19页 |
2 结果 | 第19-26页 |
第二部分 蜈蚣小分子多肽类有效部位的分离纯化及抗肿瘤活性筛选 | 第26-40页 |
1 材料与方法 | 第26-33页 |
·细胞株 | 第26页 |
·药物及试剂 | 第26页 |
·主要仪器设备 | 第26-27页 |
·实验方法 | 第27-32页 |
·统计学方法 | 第32-33页 |
2 结果 | 第33-40页 |
·sephadex G-25凝胶层析色谱图 | 第33页 |
·分离纯化的小分子多肽类各有效部位的多肽含量测定 | 第33-34页 |
·纯化物A1、A2、A3对HepG2细胞、Be1-7042和A549细胞增殖抑制作用的影响 | 第34-36页 |
·C18反相高效液相对A2的成分情况考察 | 第36-37页 |
·纯化物诱导HepG2细胞凋亡及对细胞周期的影响 | 第37-38页 |
·荧光显微镜下HepG2细胞的凋亡形态 | 第38-40页 |
第三部分 讨论 | 第40-46页 |
1 蜈蚣抗肿瘤研究 | 第40-41页 |
2 蜈蚣提取方法研究 | 第41-42页 |
3 蜈蚣有效成分的分离与纯化 | 第42-44页 |
·凝胶过滤层析在动物类药中的应用 | 第42-43页 |
·蜈蚣有效成分分离与纯化 | 第43-44页 |
4 筛选出的小分子多肽类组分对人肝癌HepG2细胞生物学行为的影响 | 第44页 |
5 进一步研究与展望 | 第44-46页 |
结论 | 第46-47页 |
致谢 | 第47-51页 |
附录1 文献综述 | 第51-61页 |
参考文献 | 第58-61页 |
附录2 攻读硕士学位期间的主要成果 | 第61页 |