| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 本文缩略词(Abbreviation) | 第11-16页 |
| 引言 | 第16-18页 |
| 1 文献综述 | 第18-36页 |
| ·植物启动子研究进展 | 第18-32页 |
| ·植物启动子基本结构特征 | 第18-19页 |
| ·植物启动子研究策略 | 第19-26页 |
| ·植物启动子的类型及其作用机制 | 第26-32页 |
| ·组成型启动子 | 第26-27页 |
| ·诱导型启动子 | 第27-30页 |
| ·组织特异型启动子 | 第30-31页 |
| ·双向启动子和人工启动子 | 第31-32页 |
| ·杨树TIR-NBS类抗病相关基因及其启动子研究概况 | 第32-34页 |
| ·杨树TIR-NBS类抗病相关基因 | 第32-34页 |
| ·杨树TIR-NBS类抗病相关基因的表达调控及其启动子研究 | 第34页 |
| ·立题依据与技术路线 | 第34-36页 |
| 2 毛白杨PtDrl02基因的表达特性及其启动子区的克隆与分析 | 第36-52页 |
| ·材料与方法 | 第36-41页 |
| ·材料与试剂 | 第36-37页 |
| ·植物材料 | 第36-37页 |
| ·质粒与菌株 | 第37页 |
| ·酶和生化试剂 | 第37页 |
| ·主要仪器设备 | 第37页 |
| ·实验方法 | 第37-41页 |
| ·材料处理 | 第37页 |
| ·总RNA的提取及第一链cDNA的合成 | 第37-38页 |
| ·PtDrl02基因的半定量RT-PCR分析 | 第38页 |
| ·PtDrl02基因的实时荧光定量qRT-PCR分析 | 第38-39页 |
| ·总DNA的提取与启动子的克隆及序列测定 | 第39-41页 |
| ·核酸及蛋白序列的生物信息学分析 | 第41页 |
| ·结果与分析 | 第41-50页 |
| ·毛白杨PtDrl02基因的组织表达特性 | 第45-46页 |
| ·毛白杨PtDrl02基因病原相关诱导表达特性 | 第46-47页 |
| ·毛白杨PtDrl02基因启动子的克隆 | 第47-48页 |
| ·毛白杨PtDrl02基因启动子的序列分析 | 第48-50页 |
| ·讨论 | 第50-52页 |
| 3 毛白杨PtDrl02启动子的结构分析与功能鉴定 | 第52-72页 |
| ·材料与方法 | 第52-59页 |
| ·材料与试剂 | 第52-53页 |
| ·植物材料 | 第52页 |
| ·质粒与菌株 | 第52-53页 |
| ·酶和生化试剂 | 第53页 |
| ·主要仪器设备 | 第53页 |
| ·实验方法 | 第53-59页 |
| ·启动子全长与5′缺失序列的PCR扩增 | 第53-54页 |
| ·启动子全长与5′缺失序列植物表达载体的构建 | 第54-55页 |
| ·PtDrl02启动子双向表达植物载体的构建 | 第55-56页 |
| ·植物表达载体向农杆菌的转化 | 第56页 |
| ·烟草遗传转化及转基因植株的筛选与鉴定 | 第56-57页 |
| ·启动子双向表达载体的瞬时表达 | 第57页 |
| ·材料处理 | 第57页 |
| ·GUS组织化学染色 | 第57-58页 |
| ·GUS蛋白活性分析 | 第58页 |
| ·GUS与GFP报告基因的mRNA表达分析 | 第58页 |
| ·启动子与PtWRKY1转录因子基因的共转化及瞬时表达分析 | 第58-59页 |
| ·结果与分析 | 第59-68页 |
| ·PtDrl02启动子全长及其5′缺失序列植物表达载体的构建 | 第59-61页 |
| ·转基因烟草植株的获得 | 第61页 |
| ·PtDrl02启动子的组织表达特性 | 第61-63页 |
| ·PtDrl02启动子基本上游调控元件的鉴定 | 第63页 |
| ·PtDrl02启动子逆境诱导响应功能域的鉴定 | 第63-65页 |
| ·PtDrl02启动子上游调控元件的方向性分析 | 第65-68页 |
| ·毛白杨PtWRKY1转录因子对PtDrl02启动子活性的调控 | 第68页 |
| ·讨论 | 第68-72页 |
| 4 5′非编码区序列对PtDrl02启动子功能活性的影响 | 第72-84页 |
| ·材料与方法 | 第72-74页 |
| ·材料与试剂 | 第72-73页 |
| ·植物材料 | 第72页 |
| ·质粒与菌株 | 第72页 |
| ·酶和生化试剂 | 第72-73页 |
| ·主要仪器设备 | 第73页 |
| ·实验方法 | 第73-74页 |
| ·核酸及蛋白序列的生物信息学分析 | 第73页 |
| ·启动子-5′UTR序列融合表达植物载体的构建 | 第73页 |
| ·植物表达载体向农杆菌的转化 | 第73-74页 |
| ·植物表达载体的瞬时活性分析 | 第74页 |
| ·烟草遗传转化及转基因植株的筛选与鉴定 | 第74页 |
| ·材料处理 | 第74页 |
| ·GUS组织化学染色 | 第74页 |
| ·GUS蛋白活性分析 | 第74页 |
| ·GUS报告基因的mRNA表达分析 | 第74页 |
| ·结果与分析 | 第74-81页 |
| ·PtDrl02基因5′非编码区序列的生物信息学分析 | 第74-76页 |
| ·植物表达载体的构建 | 第76页 |
| ·P-985/UTR/GUS植物表达载体的瞬时表达分析 | 第76-77页 |
| ·启动子-5′UTR转基因烟草GUS表达分析 | 第77-80页 |
| ·PtDrl025′UTR序列对PtDrl02启动子诱导表达活性的影响 | 第80-81页 |
| ·讨论 | 第81-84页 |
| 5 PtDrl02启动子在转基因毛白杨中的表达特性 | 第84-96页 |
| ·材料与方法 | 第84-86页 |
| ·材料与试剂 | 第84-85页 |
| ·植物材料 | 第84-85页 |
| ·质粒与菌株 | 第85页 |
| ·酶和生化试剂 | 第85页 |
| ·主要仪器设备 | 第85页 |
| ·实验方法 | 第85-86页 |
| ·杨树遗传转化及转基因植株的筛选与鉴定 | 第85页 |
| ·材料处理 | 第85-86页 |
| ·GUS组织化学染色 | 第86页 |
| ·半定量RT-PCR分析与实时荧光定量qRT-PCR分析 | 第86页 |
| ·结果与分析 | 第86-89页 |
| ·转PtDrl02启动子毛白杨的获得及其分子鉴定 | 第86-88页 |
| ·PtDrl02启动子在转基因毛白杨中的组织表达特性 | 第88-89页 |
| ·PtDrl02启动子在转基因毛白杨中的诱导表达特性 | 第89页 |
| ·讨论 | 第89-96页 |
| 6 结论与展望 | 第96-100页 |
| ·结论 | 第96-98页 |
| ·展望 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-120页 |
| 个人简介 | 第120-122页 |
| 导师简介 | 第122-124页 |
| 硕博期间发表的论文与登录的基因 | 第124-126页 |
| 致谢 | 第126页 |
