| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-9页 |
| 主要符号表 | 第9-10页 |
| 前言 | 第10-12页 |
| 材料与方法 | 第12-26页 |
| 1. 材料 | 第12-14页 |
| ·材料和试剂 | 第12-13页 |
| ·主要实验仪器 | 第13-14页 |
| 2. 方法 | 第14-26页 |
| ·应用 TPA/NaB 诱导EBV 进入裂解期 | 第14页 |
| ·流式细胞分析TPA/NaB 诱导后Raji 细胞周期的变化 | 第14-15页 |
| ·Zta 和Rta 真核表达载体的构建 | 第15-19页 |
| ·Raji 细胞的转染 | 第19-21页 |
| ·分析 EBV 被激活后调控细胞周期相关蛋白的表达 | 第21-22页 |
| ·特异性siRNA 干扰 Zta 表达 | 第22-24页 |
| ·进一步分析 Zta 和Rta 在EBV 激活过程中的相互影响 | 第24-26页 |
| 结果 | 第26-38页 |
| 1.EBV 进入裂解期引起了细胞周期的变化 | 第26-29页 |
| 2.带GFP 标签的Zta、Rta 和带myc 标签的Rta 真核表达载体的构建 | 第29-30页 |
| 3.裂解期EBV Zta 和Rta 蛋白表达促进了Raji 细胞进入了S 期 | 第30-33页 |
| 4.EBV 的激活调控了细胞周期蛋白 | 第33-35页 |
| 5.EBV 激活后是Zta 和Rta 的过表达调控了细胞周期蛋白 | 第35页 |
| 6.特异性siRNA 可阻断Zta 对细胞周期蛋白的调控 | 第35-36页 |
| 7.Zta 和Rta 的相互激活在EBV 裂解期中发挥了重要作用 | 第36-37页 |
| 8.构建荧光素酶报告载体 | 第37-38页 |
| 9.Zta 和Rta 对Zta 启动子活性的影响 | 第38页 |
| 讨论 | 第38-42页 |
| 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 【综述】 | 第47-55页 |
| 攻读硕士学位期间发表的文章 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
