| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-15页 |
| 前言 | 第15-24页 |
| 1.杧果分类与杧果育种研究进展 | 第15-18页 |
| ·杧果分类研究进展 | 第15-17页 |
| ·杧果属种的分类 | 第15-16页 |
| ·杧果品种的分类 | 第16-17页 |
| ·分子标记在杧果品种分类中的应用 | 第17页 |
| ·杧果育种研究进展 | 第17-18页 |
| ·常规育种在杧果上的研究进展 | 第17-18页 |
| ·生物技术在杧果育种中的应用 | 第18页 |
| 2.分子标记技术在果树上的应用研究进展 | 第18-23页 |
| ·基于基因组或核DNA的分子标记技术在果树上的应用 | 第19-21页 |
| ·分子标记在种质资源研究中的应用 | 第19-20页 |
| ·系谱分析和分类 | 第19-20页 |
| ·核心种质的建立 | 第20页 |
| ·构建指纹图谱和品种鉴别 | 第20页 |
| ·体细胞杂种和外源基因渗入的鉴定 | 第20页 |
| ·构建分子遗传图谱 | 第20-21页 |
| ·基因连锁标记的寻找与基因定位 | 第21页 |
| ·基于cpDNA的分子标记在果树上的应用 | 第21-22页 |
| ·分子标记技术在杧果上的应用 | 第22-23页 |
| ·品种鉴定和遗传多样性研究 | 第22页 |
| ·构建分子遗传图谱 | 第22-23页 |
| 3.立论依据 | 第23-24页 |
| 第一章 材料与方法 | 第24-33页 |
| ·供试材料 | 第24-27页 |
| ·实验仪器与试剂 | 第27-29页 |
| ·实验仪器 | 第27-28页 |
| ·实验试剂 | 第28-29页 |
| ·提取基因组DNA所需的试剂 | 第28页 |
| ·提取叶绿体DNA所需的试剂 | 第28页 |
| ·PCR及电泳所需的试剂 | 第28-29页 |
| ·DNA的提取及质量检测 | 第29-31页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第29-30页 |
| ·SDS法 | 第29页 |
| ·CTAB法 | 第29页 |
| ·改良CTAB法 | 第29-30页 |
| ·叶绿体DNA的提取 | 第30页 |
| ·DNA质量检测 | 第30-31页 |
| ·紫外分光光度计检测法 | 第31页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳法 | 第31页 |
| ·ISSR扩增反应检测 | 第31页 |
| ·ISSR-PCR反应体系的建立 | 第31-32页 |
| ·DNA模板用量 | 第31-32页 |
| ·引物浓度的分析 | 第32页 |
| ·rTaq酶浓度 | 第32页 |
| ·dNTP浓度 | 第32页 |
| ·引物的筛选 | 第32页 |
| ·数据分析 | 第32-33页 |
| 第二章 结果与分析 | 第33-54页 |
| ·杧果基因组DNA提取方法的比较研究 | 第33-35页 |
| ·紫外分光光度计检测 | 第33页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测 | 第33-34页 |
| ·ISSR扩增反应检测 | 第34-35页 |
| ·杧果叶绿体DNA的提取 | 第35-37页 |
| ·电泳、酶切检测 | 第35-36页 |
| ·PCR检测 | 第36-37页 |
| ·杧果ISSR扩增体系的建立 | 第37-40页 |
| ·DNA模板浓度对ISSR-PCR的影响 | 第37页 |
| ·引物浓度对ISSR扩增效果的影响 | 第37-38页 |
| ·rTaq DNA聚合酶浓度对ISSR扩增效果的影响 | 第38页 |
| ·dNTP对ISSR扩增效果的影响 | 第38-39页 |
| ·ISSR-PCR反应体系 | 第39页 |
| ·ISSR扩增条件 | 第39-40页 |
| ·ISSR引物筛选 | 第40-41页 |
| ·基因组DNA ISSR引物 | 第40页 |
| ·叶绿体DNA ISSR引物 | 第40-41页 |
| ·ISSR鉴定亲缘关系非常近的杧果栽培品种 | 第41-43页 |
| ·DNA的扩增和多态性的分析 | 第41-42页 |
| ·聚类分析 | 第42-43页 |
| ·广西本地杧果品种的ISSR分析 | 第43-45页 |
| ·DNA的扩增和多态性的分析 | 第43-44页 |
| ·聚类分析 | 第44-45页 |
| ·利用基因组ISSR和叶绿体ISSR评价杧果的遗传多样性和亲缘关系 | 第45-49页 |
| ·基于基因组DNA和叶绿体DNA ISSR多态性分析 | 第45-47页 |
| ·基于基因组DNA与叶绿体DNA的ISSR聚类图对比分析 | 第47-49页 |
| ·ISSR—PCR与生理病害相关性的分析 | 第49-51页 |
| ·DNA扩增和多态性分析 | 第49-50页 |
| ·ISSR-PCR与生理病害相关性的分析 | 第50-51页 |
| ·ISSR-PCR在鉴定杧果炭疽病上的应用 | 第51-54页 |
| ·DNA扩增和多态性分析 | 第51-52页 |
| ·杧果对炭疽病抗性与其ISSR聚类组的相关性分析 | 第52-54页 |
| 第三章 讨论 | 第54-60页 |
| ·基因组DNA提取方法的改良 | 第54-55页 |
| ·杧果叶绿体DNA的提取 | 第55页 |
| ·杧果ISSR-PCR反应体系的优化 | 第55-56页 |
| ·杧果ISSR-PCR体系的分析 | 第55-56页 |
| ·ISSR引物的退火温度 | 第56页 |
| ·杧果ISSR—PCR的引物筛选 | 第56-57页 |
| ·ISSR鉴定亲缘关系非常近的杧果栽培品种 | 第57页 |
| ·广西本地杧果品种的ISSR分析 | 第57-58页 |
| ·基因组ISSR与叶绿体ISSR比较分析杧果亲缘关系 | 第58页 |
| ·杧果果实生理病害与ISSR相关性 | 第58-59页 |
| ·杧果对炭疽病抗性与其ISSR聚类组的相关性分析 | 第59-60页 |
| 第四章 结论 | 第60-64页 |
| ·获得了一种简便、高效的杧果基因DNA提取方法 | 第60页 |
| ·探索出杧果叶绿体DNA的提取方法 | 第60页 |
| ·优化了杧果ISSR-PCR的反应体系和程序 | 第60-61页 |
| ·筛选出了条带清晰、多态性好的杧果ISSR引物 | 第61页 |
| ·杧果的遗传多样性非常丰富 | 第61页 |
| ·ISSR技术可以用于区分亲缘关系非常近的杧果 | 第61-62页 |
| ·利用ISSR技术探讨了广西杧果地方品种的亲缘关系 | 第62页 |
| ·首次将叶绿体DNA ISSR技术应用于杧果亲缘关系研究 | 第62页 |
| ·提出了一种快速检测杧果果实生理病害的方法 | 第62-63页 |
| ·ISSR技术可用于杧果炭疽病的早期鉴定 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-72页 |
| 附录 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 攻读硕士期间发表的文章 | 第74页 |
