| 中文摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语表 | 第8-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-55页 |
| 1.1 前言 | 第13页 |
| 1.2 生物硫醇 | 第13页 |
| 1.3 硫化氢 | 第13-23页 |
| 1.3.1 基于H_2S还原性的荧光探针 | 第15-18页 |
| 1.3.2 基于H_2S亲核性的荧光探针 | 第18-22页 |
| 1.3.3 基于硫化铜沉淀机理的荧光探针 | 第22-23页 |
| 1.4 活性氧 | 第23-24页 |
| 1.5 活性氮 | 第24页 |
| 1.6 过氧亚硝基阴离子 | 第24-32页 |
| 1.6.1 基于硫属化合物氧化机理的荧光探针 | 第25-26页 |
| 1.6.2 基于硼酸盐羟基化机理的荧光探针 | 第26-28页 |
| 1.6.3 基于酰肼氧化机理的荧光探针 | 第28-29页 |
| 1.6.4 基于C=C双键裂解的荧光探针 | 第29-30页 |
| 1.6.5 基于N-脱芳基化的荧光探针 | 第30-31页 |
| 1.6.6 其他反应类型的荧光探针 | 第31-32页 |
| 1.7 癌症治疗诊断学 | 第32-39页 |
| 1.7.1 靶向癌细胞诊疗前药分子的设计 | 第33-34页 |
| 1.7.2 基于巯基类化合物激活的荧光药物释放 | 第34-35页 |
| 1.7.3 基于过氧化氢激活的荧光药物释放 | 第35-37页 |
| 1.7.4 基于酸性pH激活的荧光药物释放 | 第37页 |
| 1.7.5 基于酶促反应的荧光药物释 | 第37-38页 |
| 1.7.6 基于缺氧环境激活的荧光药物释放 | 第38-39页 |
| 1.8 线粒体靶向策略及意义 | 第39-41页 |
| 1.9 课题设计思路及拟解决的问题 | 第41-42页 |
| 1.10 参考文献 | 第42-55页 |
| 第二章 基于二苯乙烯基吡啶盐骨架设计荧光探针检测线粒体的基准硫化氢水平 | 第55-84页 |
| 2.1 引言 | 第55-63页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第63-72页 |
| 2.2.1 探针MNOP-H_2S的合成 | 第63-64页 |
| 2.2.2 荧光量子产率的测定 | 第64页 |
| 2.2.3 探针的光谱性质及响应机理的研究 | 第64-65页 |
| 2.2.4 浓度滴定及线性关系的研究 | 第65-67页 |
| 2.2.5 响应时间的研究 | 第67页 |
| 2.2.6 选择性的研究 | 第67页 |
| 2.2.7 pH的研究 | 第67-68页 |
| 2.2.8 活细胞成像的研究 | 第68-72页 |
| 2.2.9 活体成像的研究 | 第72页 |
| 2.3 小结 | 第72-73页 |
| 2.4 仪器与试剂 | 第73-74页 |
| 2.4.1 仪器 | 第73页 |
| 2.4.2 试剂 | 第73-74页 |
| 2.5 试验方法 | 第74-77页 |
| 2.5.1 MNOP-H_2S的合成及表征 | 第74-75页 |
| 2.5.2 测试溶液的配制 | 第75-76页 |
| 2.5.3 量子产率的测定 | 第76页 |
| 2.5.4 细胞培养 | 第76页 |
| 2.5.5细胞毒活性实验 | 第76页 |
| 2.5.6 荧光成像 | 第76-77页 |
| 2.5.7细胞划痕损伤修复实验 | 第77页 |
| 2.5.8 斑马鱼成像 | 第77页 |
| 2.5.9 数据统计分析 | 第77页 |
| 2.6 参考文献 | 第77-84页 |
| 第三章 设计线粒体靶向的具有“ESIPT+ AIE”特征的ONOO-荧光探针 | 第84-101页 |
| 3.1 引言 | 第84-85页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第85-94页 |
| 3.2.1 探针TBSA的合成 | 第85-86页 |
| 3.2.2 聚集诱导发光 | 第86-87页 |
| 3.2.3 探针的光谱性质及响应机理的研究 | 第87-88页 |
| 3.2.4 浓度滴定及线性关系的研究 | 第88-89页 |
| 3.2.5 响应时间的研究 | 第89-90页 |
| 3.2.6 选择性的研究 | 第90页 |
| 3.2.7 pH的研究 | 第90页 |
| 3.2.8 活细胞成像的研究 | 第90-93页 |
| 3.2.9 活体成像的研究 | 第93-94页 |
| 3.3 小结 | 第94页 |
| 3.4 仪器与试剂 | 第94页 |
| 3.4.1 仪器 | 第94页 |
| 3.4.2 试剂 | 第94页 |
| 3.5 试验方法 | 第94-98页 |
| 3.5.1 TBSA的合成及表征 | 第94-96页 |
| 3.5.2 测试溶液的配制 | 第96-97页 |
| 3.5.3 细胞培养 | 第97页 |
| 3.5.4细胞毒活性实验 | 第97页 |
| 3.5.5 荧光成像 | 第97页 |
| 3.5.6 斑马鱼成像 | 第97-98页 |
| 3.6 参考文献 | 第98-101页 |
| 第四章 设计线粒体靶向的具有“ESIPT+ AIE”特征的促氧化抗癌诊疗前药 | 第101-110页 |
| 4.1 引言 | 第101-102页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第102-105页 |
| 4.2.1 前药 Mito-TSSA 的合成 | 第102-103页 |
| 4.2.2 前药的光谱性质及响应机理的研究 | 第103-104页 |
| 4.2.3 聚集诱导发光研究 | 第104-105页 |
| 4.3 仪器与试剂 | 第105-106页 |
| 4.3.1 仪器 | 第105页 |
| 4.3.2 试剂 | 第105-106页 |
| 4.4 试验方法 | 第106-108页 |
| 4.4.1 Mito-TSSA的合成及表征 | 第106-107页 |
| 4.4.2 测试溶液的配制 | 第107-108页 |
| 4.5 参考文献 | 第108-110页 |
| 第五章 总结与展望 | 第110-112页 |
| 部分化合物谱图 | 第112-124页 |
| 致谢 | 第124页 |
