| 摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-81页 |
| ·植物激素概述 | 第14-17页 |
| ·细胞分裂素概述 | 第17-25页 |
| ·细胞分裂素的生物合成和代谢 | 第19-21页 |
| ·细胞分裂素的功能 | 第21-25页 |
| ·内源性细胞分裂素分析的样品制备技术 | 第25-31页 |
| ·细胞分裂素的提取 | 第25-26页 |
| ·细胞分裂素的富集纯化 | 第26-31页 |
| ·液液萃取（Liquid-liquid extraction，LLE） | 第26页 |
| ·固相萃取（Solid phase extraction，SPE） | 第26-29页 |
| ·免疫亲和纯化（Immunoaffinity purification，IAP） | 第29-31页 |
| ·细胞分裂素的分析技术 | 第31-41页 |
| ·气相色谱法 | 第31-33页 |
| ·高效液相色谱法 | 第33-37页 |
| ·超高效液相色谱法 | 第37页 |
| ·毛细管电泳法 | 第37-40页 |
| ·免疫测定法 | 第40-41页 |
| ·其它分析技术 | 第41页 |
| ·新型分析方法 | 第41-54页 |
| ·固相微萃取技术（solid phase microextraction，SPME） | 第42-49页 |
| ·纤维涂层固相微萃取（Fiber SPME） | 第42-43页 |
| ·搅拌棒吸附萃取（SBSE） | 第43-45页 |
| ·管内固相微萃取（in-tube SPME） | 第45-47页 |
| ·聚合物整体柱微萃取（PMME） | 第47-49页 |
| ·磁固相萃取（MSPE） | 第49-51页 |
| ·液相色谱分离技术 | 第51-54页 |
| ·离子交换色谱（IEC） | 第51页 |
| ·亲水作用色谱（HILIC） | 第51-53页 |
| ·混合模式色谱（MMC） | 第53-54页 |
| ·论文选题依据、意义及研究内容 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-81页 |
| 第二章 聚合物整体柱微萃取与亲水作用色谱-串联质谱联用定量分析植物样品中的细胞分裂素 | 第81-105页 |
| ·前言 | 第81-82页 |
| ·实验部分 | 第82-88页 |
| ·试剂 | 第82-83页 |
| ·生物材料 | 第83页 |
| ·聚（2-丙烯酰胺-2-甲基-1-丙磺酸-乙二醇二甲基丙烯酸酯）整体柱的制备 | 第83-85页 |
| ·样品预处理 | 第85-86页 |
| ·C_(18)SPE+PMME 方法 | 第85页 |
| ·C_(18)SPE+Oasis MCX SPE 方法 | 第85-86页 |
| ·HPLC-ESI(+)-MS 仪器和分析条件 | 第86-88页 |
| ·结果与讨论 | 第88-101页 |
| ·亲水作用色谱质谱联用条件优化 | 第88-90页 |
| ·聚合物整体柱微萃取条件的优化 | 第90-91页 |
| ·植物基质对萃取效率的影响 | 第91-94页 |
| ·方法学考察 | 第94-97页 |
| ·工作曲线和检出限 | 第94-95页 |
| ·方法的精密度和准确性 | 第95-97页 |
| ·方法对比 | 第97页 |
| ·植物样品中细胞分裂素的定量分析 | 第97-101页 |
| ·结论 | 第101页 |
| 参考文献 | 第101-105页 |
| 第三章 植物叶中内源性细胞分裂素的固相萃取新方法 | 第105-124页 |
| ·前言 | 第105-107页 |
| ·实验部分 | 第107-109页 |
| ·试剂和药品 | 第107页 |
| ·植物材料 | 第107页 |
| ·样品预处理 | 第107-109页 |
| ·HPLC-ESI(+)-MS 仪器和分析条件 | 第109页 |
| ·结果与讨论 | 第109-119页 |
| ·混合模式固相萃取条件的优化 | 第109-114页 |
| ·固相萃取材料用量的优化 | 第109-110页 |
| ·上样条件和解吸条件的优化 | 第110-113页 |
| ·上样流速和解吸流速的优化 | 第113-114页 |
| ·混合模式固相萃取材料重现性考察 | 第114-115页 |
| ·方法学考察 | 第115-117页 |
| ·工作曲线和检出限 | 第115页 |
| ·方法的精密度和准确性 | 第115-117页 |
| ·实际样品分析 | 第117-119页 |
| ·结论 | 第119-120页 |
| 参考文献 | 第120-124页 |
| 第四章 串联固相萃取-在线富集-亲水作用色谱-串联质谱系统联用灵敏检测植物组织中的内源性细胞分裂素 | 第124-149页 |
| ·前言 | 第124-125页 |
| ·实验部分 | 第125-129页 |
| ·试剂和药品 | 第125-126页 |
| ·植物材料 | 第126页 |
| ·聚（甲基丙烯酸-乙二醇二甲基丙烯酸酯）整体柱的制备 | 第126页 |
| ·样品预处理 | 第126-129页 |
| ·串联 SPE-在线富集-亲水作用色谱串联质谱联用法（Tandem SPE-online trapping-HILIC-MS/MS） | 第126-127页 |
| ·液液萃取-反相色谱-串联质谱方法（LLE-RPLC-MS/MS） | 第127-129页 |
| ·HPLC-ESI(+)-MS 仪器和分析条件 | 第129页 |
| ·结果与讨论 | 第129-144页 |
| ·混合模式 SPE 条件的优化 | 第129-131页 |
| ·材料用量的优化 | 第129-131页 |
| ·解吸体积的优化 | 第131页 |
| ·在线富集和解吸条件的优化 | 第131-135页 |
| ·在线富集柱的选择 | 第131-132页 |
| ·在线富集条件的优化 | 第132页 |
| ·在线解吸条件的优化 | 第132-133页 |
| ·萃取时间曲线 | 第133-135页 |
| ·方法学考察 | 第135-137页 |
| ·工作曲线和检出限 | 第135页 |
| ·方法的精密度和准确度 | 第135-137页 |
| ·植物用量考察 | 第137-141页 |
| ·实际样品分析 | 第141-144页 |
| ·结论 | 第144-145页 |
| 参考文献 | 第145-149页 |
| 第五章 基于磁固相萃取的内源性细胞分裂素 HILIC-MS 分析方法 | 第149-173页 |
| ·前言 | 第149-150页 |
| ·实验部分 | 第150-155页 |
| ·试剂和药品 | 第150-151页 |
| ·植物材料 | 第151页 |
| ·Fe_3O_4/SiO_2/P(AMPS-co-EGDMA)磁性聚合物的制备 | 第151-153页 |
| ·样品预处理 | 第153页 |
| ·仪器和分析条件 | 第153-155页 |
| ·结果与讨论 | 第155-168页 |
| ·磁性聚合物 Fe_3O_4/SiO_2/P(AMPS-co-EGDMA)的表征 | 第155-157页 |
| ·磁性多孔聚合物 Fe_3O_4/SiO_2/P(AMPS-co-EGDMA)的制备重现性 | 第157页 |
| ·磁固相萃取（MSPE）条件的优化 | 第157-160页 |
| ·磁固相萃取材料用量的优化 | 第157页 |
| ·上样溶液 pH 的优化 | 第157-159页 |
| ·上样溶液有机溶剂含量的优化 | 第159页 |
| ·萃取时间和解吸时间的考察 | 第159-160页 |
| ·对比实验 | 第160-161页 |
| ·方法学考察 | 第161-166页 |
| ·实际样品分析 | 第166-168页 |
| ·结论 | 第168页 |
| 参考文献 | 第168-173页 |
| 第六章 总结与展望 | 第173-176页 |
| 附录 | 第176-178页 |
| 致谢 | 第178-180页 |
| 附件 | 第180-182页 |
