中文摘要 | 第1-11页 |
ABSTRACT | 第11-12页 |
前言 | 第12-23页 |
一 成瘾性药物简介 | 第12-15页 |
二 抗坏血酸 | 第15-18页 |
(一) 脑内抗坏血酸 | 第15-16页 |
(二) 外周抗坏血酸 | 第16-17页 |
(三) AA与谷氨酸能神经系统 | 第17-18页 |
(四) AA与成瘾性药物 | 第18页 |
三 N-甲基-D-天冬氨酸受体在脑中的作用 | 第18-20页 |
四 谷氨酸能神经系统与药物成瘾 | 第20页 |
五 纹状体、伏隔核以及海马在脑中的作用 | 第20-22页 |
六 立题依据 | 第22-23页 |
第一部分 AA对大鼠脑NMDA-R1蛋白表达的影响 | 第23-34页 |
前言 | 第23-24页 |
一 实验材料 | 第24页 |
(一) 药品与试剂 | 第24页 |
(二) 仪器 | 第24页 |
(三) 实验动物 | 第24页 |
二 实验方法 | 第24-25页 |
(一) 大鼠脑组织处理方法 | 第24-25页 |
(二) 脑组织切片定位法 | 第25页 |
(三) 免疫组织化学染色方法 | 第25页 |
(四) 统计学处理 | 第25页 |
三 实验结果 | 第25-31页 |
(一) AA对大鼠纹状体、伏隔核和海马NR1蛋白表达的时效关系 | 第26-28页 |
(二) AA对大鼠纹状体、伏隔核和海马NR1蛋白表达的量效关系 | 第28-31页 |
四 讨论 | 第31-33页 |
五 小结 | 第33-34页 |
第二部分 成瘾药物对海马损毁大鼠伏隔核和纹状体抗坏血酸释放的影响 | 第34-48页 |
前言 | 第34-35页 |
一 实验材料 | 第35-36页 |
(一) 药品与试剂 | 第35页 |
(二) 实验仪器 | 第35-36页 |
(三) 实验动物 | 第36页 |
二 实验方法 | 第36-39页 |
(一) 大鼠海马损毁方法 | 第36页 |
(二) Nissle染色方法 | 第36页 |
(三) 脑微透析手术方法 | 第36-37页 |
1、脑内透析管的制作 | 第36-37页 |
2、脑内透析管的埋植方法 | 第37页 |
(四) 脑微透析灌流方法 | 第37-38页 |
(五) 抗坏血酸含量测定 | 第38页 |
1、检测色谱条件 | 第38页 |
2、色谱图分析与定量 | 第38页 |
(六) 统计学处理 | 第38-39页 |
三 实验结果 | 第39-45页 |
(一) HPLC-EC检测AA的线性关系 | 第39页 |
(二) Nissle染色结果 | 第39-41页 |
1、海马损毁范围 | 第39-40页 |
2、海马损毁程度 | 第40-41页 |
(三) 正常与海马损毁大鼠伏隔核与纹状体细胞外AA的基础水平 | 第41页 |
(四) 成瘾性药物对海马损毁大鼠伏隔核和纹状体细胞外AA释放的影响 | 第41-45页 |
1、乙醇对海马损毁大鼠伏隔核和纹状体细胞外AA释放的影响 | 第41-42页 |
2、甲基苯丙胺对海马损毁大鼠伏隔核和纹状体细胞外AA释放的影响 | 第42-43页 |
3、尼古丁对海马损毁大鼠伏隔核和纹状体细胞外AA释放的影响 | 第43-44页 |
4、吗啡对海马损毁大鼠伏隔核和纹状体细胞外AA释放的影响 | 第44-45页 |
四 讨论 | 第45-47页 |
五 小结 | 第47-48页 |
结论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-58页 |
致谢 | 第58-59页 |
英文缩写词表 | 第59-61页 |
发表文章 | 第61页 |