| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 前言 | 第11-15页 |
| 技术路线 | 第15-17页 |
| 材料与方法 | 第17-24页 |
| 1.材料 | 第17-18页 |
| ·主要材料与试剂 | 第17页 |
| ·主要仪器 | 第17-18页 |
| ·引物及寡核苷酸序列 | 第18页 |
| 2.方法 | 第18-24页 |
| ·细胞培养及处理 | 第18页 |
| ·组织和细胞总RNA的提取 | 第18-19页 |
| ·逆转录聚合酶链反应(RT-PCR) | 第19-20页 |
| ·酶联免疫吸附实验(ELISA) | 第20页 |
| ·生物信息学数据分析 | 第20-21页 |
| ·质粒构建 | 第21页 |
| ·脂质体转染 | 第21页 |
| ·细胞核蛋白的提取 | 第21-22页 |
| ·凝胶电泳迁移率分析(EMSA) | 第22页 |
| ·荧光素酶报告基因分析 | 第22页 |
| ·免疫印迹分析(Western blot) | 第22-23页 |
| ·统计学处理 | 第23-24页 |
| 实验结果 | 第24-31页 |
| 1.LPS处理不同时间对小鼠RAW264.7巨噬细胞KLF4蛋白表达的影响 | 第24-25页 |
| 2.LPS处理不同时间对小鼠RAW264.7巨噬细胞11,-6蛋白释放的影响 | 第25页 |
| 3.KLF4过表达对IL-6mRNA表达的影响 | 第25-27页 |
| 4.KLF4过表达对IL-6蛋白表达的影响 | 第27-28页 |
| 5.采用反义寡核苷酸技术使KLF4表达减少，然后检测IL-6的表达 | 第28-29页 |
| 6.采用EMSA检测细胞中KLF4与IL-6基因启动子区KLF4元件的结合 | 第29-30页 |
| 7.KLF4对IL-6基因启动子转录活性的影响 | 第30-31页 |
| 讨论 | 第31-33页 |
| 结论 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-37页 |
| 综述 | 第37-47页 |
| 致谢 | 第47页 |
