| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-8页 |
| 第一章 绪论 | 第8-24页 |
| ·课题研究的背景及意义 | 第8页 |
| ·EPS和SMP的研究进展 | 第8-14页 |
| ·EPS的研究进展 | 第8-10页 |
| ·SMP的研究进展 | 第10-12页 |
| ·EPS和SMP关系 | 第12-14页 |
| ·分子生物学研究进展 | 第14-22页 |
| ·分子生物学技术在环境微生物生物多样性中的应用 | 第14-15页 |
| ·PCR-DGGE技术 | 第15-22页 |
| ·主要研究内容和目的 | 第22-24页 |
| 第二章 研究的技术路线、方法和材料 | 第24-31页 |
| ·研究采用的技术路线 | 第24页 |
| ·常规项目分析及测定方法 | 第24-25页 |
| ·EPS和SMP的提取方法 | 第25页 |
| ·EPS的提取方法 | 第25页 |
| ·SMP的提取方法 | 第25页 |
| ·污泥样品的预处理和DNA提取 | 第25-26页 |
| ·污泥样品的预处理 | 第25-26页 |
| ·DNA的提取方法 | 第26页 |
| ·DNA提取试剂 | 第26页 |
| ·基因组DNA的PCR扩增 | 第26-27页 |
| ·总细菌的PCR扩增 | 第26-27页 |
| ·PCR扩增所用试剂 | 第27页 |
| ·基因组DNA及PCR扩增产物检测 | 第27-28页 |
| ·基因组DNA提取结果检测 | 第27页 |
| ·PCR扩增结果检测 | 第27页 |
| ·琼脂糖电泳所用试剂 | 第27-28页 |
| ·PCR 产物的变性梯度凝胶电泳分析(DGGE) | 第28-29页 |
| ·DGGE过程 | 第28页 |
| ·银染 | 第28页 |
| ·银染所用试剂 | 第28-29页 |
| ·DGGE凝胶片段的回收及克隆测序 | 第29页 |
| ·样品的生物多样性分析 | 第29页 |
| ·主要实验仪器 | 第29-31页 |
| 第三章 总医院MBR中EPS、SMP和生物多样性的研究 | 第31-43页 |
| ·工艺描述和取样条件 | 第31-32页 |
| ·工艺概述 | 第31页 |
| ·运行和取样条件 | 第31-32页 |
| ·总医院MBR中污泥浓度的变化 | 第32-33页 |
| ·总医院MBR中EPS和SMP的变化 | 第33-35页 |
| ·EPS和SMP总量的变化 | 第33-34页 |
| ·EPS成分变化 | 第34页 |
| ·SMP 成分变化 | 第34-35页 |
| ·MBR 中总细菌多样性分析 | 第35-41页 |
| ·活性污泥样品的选择 | 第35页 |
| ·活性污泥样品基因组 DNA 提取结果 | 第35-36页 |
| ·总细菌DNA的PCR扩增 | 第36页 |
| ·PCR产物的变性梯度凝胶电泳分析 | 第36-38页 |
| ·总细菌的shannon多样性指数分析 | 第38-39页 |
| ·污泥样品DGGE图谱中的相似性分析和聚类分析 | 第39-41页 |
| ·本章小结 | 第41-43页 |
| 第四章 贫营养条件下EPS、SMP和生物多样性的研究 | 第43-60页 |
| ·研究意义 | 第43页 |
| ·研究方法和取样条件 | 第43-44页 |
| ·贫营养下污泥浓度的变化 | 第44-45页 |
| ·贫营养下EPS和SMP的变化 | 第45-47页 |
| ·EPS和SMP总量的变化 | 第45-46页 |
| ·EPS成分变化 | 第46页 |
| ·SMP成分变化 | 第46-47页 |
| ·贫营养下活性污泥中生物多样性的研究 | 第47-58页 |
| ·活性污泥样品基因组DNA的提取结果 | 第47-48页 |
| ·总细菌DNA的PCR扩增 | 第48页 |
| ·PCR产物的变性梯度凝胶电泳分析 | 第48-50页 |
| ·总细菌shannon多样性指数分析 | 第50-51页 |
| ·污泥样品DGGE图谱中的相似性分析和聚类分析 | 第51-52页 |
| ·回收DNA克隆测序分析 | 第52-58页 |
| ·本章小结 | 第58-60页 |
| 第五章 结论与建议 | 第60-62页 |
| ·结论 | 第60-61页 |
| ·建议 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 发表论文和科研情况说明 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |