| 缩写词 | 第1-12页 |
| 摘要 | 第12-14页 |
| Abstract | 第14-17页 |
| 第一章 引言 | 第17-31页 |
| 1 植物离体形态发生的细胞组织学、生理变化及遗传变异研究进展 | 第17-23页 |
| ·植物离体形态发生的概念及途径 | 第17页 |
| ·植物离体形态发生的细胞组织学研究 | 第17-18页 |
| ·植物离体形态发生的生理变化研究 | 第18-19页 |
| ·植物离体形态发生的遗传变异研究 | 第19-23页 |
| ·遗传变异的类型 | 第19页 |
| ·影响遗传变异的因素 | 第19-21页 |
| ·遗传变异的机理 | 第21-22页 |
| ·遗传变异的检测方法 | 第22-23页 |
| 2 水仙花相关研究进展 | 第23-30页 |
| ·离体培养 | 第23-28页 |
| ·无菌体系的建立 | 第23页 |
| ·器官发生途径 | 第23-28页 |
| ·体细胞胚发生途径 | 第28页 |
| ·再生小鳞茎的继代增殖 | 第28页 |
| ·再生小鳞茎的壮苗生根培养 | 第28页 |
| ·细胞组织学 | 第28-29页 |
| ·生理变化 | 第29页 |
| ·遗传变异 | 第29页 |
| ·水仙花离体形态发生的相关研究中存在的问题 | 第29-30页 |
| 3 本研究的内容和意义 | 第30-31页 |
| ·本研究的内容 | 第30页 |
| ·本研究的意义 | 第30-31页 |
| 第二章 中国水仙高效离体培养体系的建立 | 第31-57页 |
| 第一节 中国水仙鳞茎盘切块高效离体再生体系的建立 | 第31-41页 |
| 1 材料与方法 | 第31-33页 |
| ·材料 | 第31页 |
| ·方法 | 第31-33页 |
| ·外植体的消毒及接种 | 第31-32页 |
| ·不同添加物对小鳞茎直接诱导的影响 | 第32页 |
| ·不同激素组合对鳞茎盘切块诱导愈伤组织的影响 | 第32页 |
| ·不同激素组合对鳞茎盘切块来源的愈伤组织分化的影响 | 第32页 |
| ·培养条件 | 第32-33页 |
| ·数据处理 | 第33页 |
| 2 结果与分析 | 第33-40页 |
| ·最佳消毒方法的确定 | 第33-36页 |
| ·不同消毒处理对无菌系建立的影响 | 第33-34页 |
| ·不同消毒处理因素对消毒效果的影响 | 第34页 |
| ·不同多菌灵浸泡时间对无菌系建立的影响 | 第34-36页 |
| ·不同添加物对小鳞茎直接诱导的影响 | 第36-38页 |
| ·不同天然添加物对小鳞茎直接诱导的影响 | 第36-37页 |
| ·不同浓度的甜菜碱对小鳞茎直接诱导的影响 | 第37-38页 |
| ·不同激素组合对鳞茎盘切块愈伤组织诱导的影响 | 第38-39页 |
| ·不同激素组合对愈伤组织分化的影响 | 第39-40页 |
| 3 讨论 | 第40-41页 |
| ·中国水仙鳞茎无菌系建立的关键技术措施 | 第40页 |
| ·添加物在小鳞茎直接诱导中的作用 | 第40-41页 |
| ·中国水仙鳞茎盘切块愈伤组织诱导中激素间的互作关系 | 第41页 |
| ·中国水仙鳞茎盘切块愈伤组织培养中存在的问题及解决办法的探讨 | 第41页 |
| 第二节 中国水仙子房切片高效离体再生体系的建立 | 第41-47页 |
| 1 材料与方法 | 第41-44页 |
| ·材料 | 第41页 |
| ·方法 | 第41-44页 |
| ·鳞茎预处理及外植体的取材 | 第41-42页 |
| ·外植体的消毒及接种 | 第42页 |
| ·中国水仙子房切片直接诱导小鳞茎 | 第42页 |
| ·中国水仙子房切片诱导愈伤组织 | 第42-43页 |
| ·中国水仙子房切片形成的不同类型的愈伤组织诱导小鳞茎再生 | 第43页 |
| ·培养条件 | 第43页 |
| ·数据处理 | 第43-44页 |
| 2 结果与分析 | 第44-46页 |
| ·中国水仙子房切片直接诱导小鳞茎 | 第44页 |
| ·中国水仙子房切片诱导愈伤组织 | 第44-45页 |
| ·不同激素组合对子房切片愈伤组织诱导的影响 | 第44-45页 |
| ·不同基因型及不同发育时期的子房切片对愈伤组织诱导的影响 | 第45页 |
| ·中国水仙子房切片形成的不同类型的愈伤组织诱导小鳞茎再生 | 第45-46页 |
| 3 讨论 | 第46-47页 |
| ·高浓度的6-BA 和成熟度较低的外植体有利于小鳞茎的直接发生 | 第46-47页 |
| ·中国水仙子房切片愈伤组织诱导的影响因素 | 第47页 |
| ·提高中国水仙子房切片愈伤组织小鳞茎再生效果的关键措施 | 第47页 |
| 第三节 中国水仙离体再生小鳞茎的膨大培养 | 第47-52页 |
| 1 材料与方法 | 第48页 |
| ·材料 | 第48页 |
| ·方法 | 第48页 |
| ·不同多效唑浓度对小鳞茎膨大培养的影响 | 第48页 |
| ·不同浓度的激素和多效唑对小鳞茎膨大培养的影响 | 第48页 |
| ·培养条件 | 第48页 |
| ·数据处理 | 第48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-51页 |
| ·不同多效唑浓度对小鳞茎膨大培养的影响 | 第48-49页 |
| ·不同浓度激素和多效唑对小鳞茎膨大培养的影响 | 第49-50页 |
| ·不同因素对小鳞茎膨大培养的影响 | 第50-51页 |
| 3 讨论 | 第51-52页 |
| ·多效唑对中国水仙离体再生小鳞茎膨大培养具有明显的促进作用 | 第51-52页 |
| ·中国水仙离体再生小鳞茎膨大培养的意义 | 第52页 |
| 第四节 中国水仙试管小鳞茎的继代增殖、壮苗生根及移栽 | 第52-57页 |
| 1 材料与方法 | 第52-53页 |
| ·材料 | 第52-53页 |
| ·方法 | 第53页 |
| ·继代增殖培养 | 第53页 |
| ·壮苗生根培养 | 第53页 |
| ·炼苗与移栽 | 第53页 |
| ·培养条件 | 第53页 |
| ·数据处理 | 第53页 |
| 2 结果与分析 | 第53-56页 |
| ·不同浓度6-BA 及白砂糖对试管小鳞茎继代增殖的影响 | 第53-54页 |
| ·不同浓度无机盐和活性炭对试管小鳞茎壮苗生根的影响 | 第54-55页 |
| ·不同移栽基质及预处理对中国水仙移栽成活率的影响 | 第55-56页 |
| 3 讨论 | 第56-57页 |
| ·高浓度的6-BA 和中浓度的白砂糖比较适合试管小鳞茎的继代增殖 | 第56页 |
| ·无机盐浓度与试管小鳞茎壮苗生根培养的相关性 | 第56页 |
| ·确保水仙花试管小鳞茎移栽成活的关键技术措施 | 第56-57页 |
| 第三章 中国水仙子房切片愈伤组织的细胞组织学观察 | 第57-61页 |
| 1 材料与方法 | 第57-58页 |
| ·材料 | 第57页 |
| ·方法 | 第57-58页 |
| ·材料的选取与固定 | 第57页 |
| ·材料的染色 | 第57页 |
| ·水洗、返蓝 | 第57页 |
| ·材料的脱水 | 第57页 |
| ·材料的透明、浸蜡 | 第57页 |
| ·材料的包埋 | 第57页 |
| ·切片、粘片、展片和干片 | 第57-58页 |
| ·材料的脱蜡、封片、观察 | 第58页 |
| 2 结果与分析 | 第58-60页 |
| ·中国水仙子房切片愈伤组织石蜡切片方法的建立 | 第58-59页 |
| ·材料的固定与染色 | 第58页 |
| ·材料的脱水 | 第58-59页 |
| ·材料的浸蜡与包埋 | 第59页 |
| ·材料的切片、粘片、展片 | 第59页 |
| ·材料的脱蜡、封片 | 第59页 |
| ·中国水仙不同类型愈伤组织的切片观察 | 第59-60页 |
| ·不同发育时期子房切片来源的愈伤组织的细胞组织学特征比较 | 第59页 |
| ·同一发育时期子房切片来源的三种类型愈伤组织的细胞组织学特征比较 | 第59-60页 |
| 3 讨论 | 第60-61页 |
| ·形成中国水仙子房切片不同类型愈伤组织之间细胞组织学差异的原因 | 第60页 |
| ·中国水仙子房切片各种类型愈伤组织的细胞结构与分化的关系 | 第60-61页 |
| 第四章 中国水仙愈伤组织分化过程中的若干生理变化 | 第61-82页 |
| 第一节 中国水仙愈伤组织分化过程中抗氧化酶活性与可溶性蛋白含量测定 | 第61-71页 |
| 1 材料与方法 | 第61-64页 |
| ·材料 | 第61页 |
| ·方法 | 第61-64页 |
| ·取材与材料处理 | 第61-62页 |
| ·抗氧化酶活性测定 | 第62-63页 |
| ·可溶性蛋白含量测定 | 第63-64页 |
| 2 结果与分析 | 第64-70页 |
| ·中国水仙愈伤组织分化过程中的 POD 活性变化 | 第64-66页 |
| ·不同类型愈伤组织分化过程中的 POD 活性变化 | 第65页 |
| ·不同来源的愈伤组织分化过程中的 POD 活性变化 | 第65-66页 |
| ·中国水仙愈伤组织分化过程中的 SOD 活性变化 | 第66-67页 |
| ·不同类型愈伤组织分化过程中的 SOD 活性变化 | 第66-67页 |
| ·不同来源的愈伤组织分化过程中的 SOD 活性变化 | 第67页 |
| ·中国水仙愈伤组织分化过程中的 CAT 活性变化 | 第67-68页 |
| ·不同类型愈伤组织分化过程中的 CAT 活性变化 | 第67-68页 |
| ·不同来源的愈伤组织分化过程中的 CAT 活性变化 | 第68页 |
| ·中国水仙愈伤组织分化过程中的可溶性蛋白质含量变化 | 第68-70页 |
| ·不同类型愈伤组织分化过程中的可溶性蛋白质含量变化 | 第68-69页 |
| ·不同来源的愈伤组织分化过程中的可溶性蛋白质含量变化 | 第69-70页 |
| 3 讨论 | 第70-71页 |
| ·中国水仙愈伤组织分化过程中的抗氧化酶活性变化与分化的关系 | 第70-71页 |
| ·中国水仙愈伤组织分化过程中可溶性蛋白质含量变化与分化的关系 | 第71页 |
| 第二节 中国水仙愈伤组织分化过程中可溶性糖与淀粉含量测定 | 第71-82页 |
| 1 材料与方法 | 第71-75页 |
| ·材料 | 第71-72页 |
| ·方法 | 第72-75页 |
| ·取材 | 第72页 |
| ·葡萄糖含量测定 | 第72-74页 |
| ·淀粉含量测定 | 第74-75页 |
| 2 结果与分析 | 第75-80页 |
| ·中国水仙愈伤组织分化过程中的葡萄糖含量变化 | 第75-76页 |
| ·不同类型愈伤组织分化过程中的葡萄糖含量变化 | 第75页 |
| ·不同来源的愈伤组织分化过程中的葡萄糖含量变化 | 第75-76页 |
| ·中国水仙愈伤组织分化过程中的果糖含量变化 | 第76-77页 |
| ·不同类型愈伤组织分化过程中的果糖含量变化 | 第76-77页 |
| ·不同来源的愈伤组织分化过程中的果糖含量变化 | 第77页 |
| ·中国水仙愈伤组织分化过程中的蔗糖含量变化 | 第77-79页 |
| ·不同类型愈伤组织分化过程中的蔗糖含量变化 | 第77-78页 |
| ·不同来源的愈伤组织分化过程中的蔗糖含量变化 | 第78-79页 |
| ·中国水仙愈伤组织分化过程中的淀粉含量变化 | 第79-80页 |
| ·不同类型愈伤组织分化过程中的淀粉含量变化 | 第79页 |
| ·不同来源的愈伤组织分化过程中的淀粉含量变化 | 第79-80页 |
| 3 讨论 | 第80-82页 |
| ·中国水仙愈伤分化过程中可溶性糖含量变化与分化的关系 | 第80页 |
| ·中国水仙愈伤分化过程中淀粉含量变化与愈伤组织分化的进程基本同步 | 第80-81页 |
| ·中国水仙愈伤分化过程中可溶性总糖与淀粉含量变化的关系 | 第81-82页 |
| 第五章 中国水仙离体形态发生的遗传稳定性检测 | 第82-106页 |
| 第一节 中国水仙不同再生途径组培苗遗传稳定性的细胞学检测 | 第82-88页 |
| 1 材料与方法 | 第82-84页 |
| ·材料 | 第83页 |
| ·仪器与试剂 | 第83页 |
| ·主要仪器设备 | 第83页 |
| ·主要试验试剂 | 第83页 |
| ·主要溶液配制 | 第83页 |
| ·方法 | 第83-84页 |
| ·染色体制片步骤的初步确定 | 第83-84页 |
| ·染色体制片技术的优化 | 第84页 |
| ·数据统计 | 第84页 |
| 2 结果与分析 | 第84-87页 |
| ·染色体最佳制片技术的确定 | 第84-86页 |
| ·取材时间的确定 | 第84-85页 |
| ·预处理时间的确定 | 第85页 |
| ·解离时间的确定 | 第85-86页 |
| ·中国水仙再生小鳞茎壮苗生根阶段根尖细胞的染色体数目变异分析 | 第86-87页 |
| 3 讨论 | 第87-88页 |
| ·染色体制片技术的关键步骤 | 第87页 |
| ·经离体培养后中国水仙在细胞学水平上保持了较高的遗传稳定性 | 第87页 |
| ·引起离体形态发生后少数细胞染色体数目产生不同程度变异的原因分析 | 第87-88页 |
| 第二节 中国水仙不同离体器官发生途径中遗传稳定性的 ISSR 检测 | 第88-106页 |
| 1 材料与方法 | 第89-93页 |
| ·材料 | 第89页 |
| ·仪器与试剂 | 第89-91页 |
| ·主要仪器设备 | 第89页 |
| ·主要试验试剂 | 第89-90页 |
| ·主要溶液配制 | 第90-91页 |
| ·ISSR 分析方法 | 第91-93页 |
| ·中国水仙基因组 DNA 的提取 | 第91页 |
| ·中国水仙基因组 DNA 的纯化 | 第91页 |
| ·中国水仙基因组 DNA 质量检测 | 第91-92页 |
| ·ISSR–PCR 扩增反应引物的筛选 | 第92页 |
| ·ISSR-PCR 反应体系及程序 | 第92页 |
| ·ISSR–PCR 扩增反应产物的检测 | 第92-93页 |
| ·统计分析方法 | 第93页 |
| 2 结果与分析 | 第93-103页 |
| ·中国水仙离体培养物DNA 的提取及质量检测 | 第93-95页 |
| ·引物及退火温度对 PCR 结果的影响 | 第95-96页 |
| ·中国水仙鳞茎盘切块离体形态发生遗传稳定性的ISSR 检测 | 第96-100页 |
| ·直接器官发生途径中不同培养阶段的培养物遗传稳定性分析 | 第96-98页 |
| ·间接器官发生途径中不同培养阶段的培养物遗传稳定性分析 | 第98页 |
| ·愈伤组织来源的离体培养物及再生植株之间的遗传变异分析 | 第98-100页 |
| ·中国水仙子房切片离体形态发生遗传稳定性的ISSR 检测 | 第100-103页 |
| ·直接器官发生途径中不同培养阶段的培养物遗传稳定性分析 | 第100-101页 |
| ·间接器官发生途径中不同培养阶段的培养物遗传稳定性分析 | 第101-102页 |
| ·愈伤组织来源的离体培养物及再生植株之间的遗传变异分析 | 第102-103页 |
| 3 讨论 | 第103-106页 |
| ·引物退火温度对ISSR-PCR 扩增反应有重要影响 | 第103-104页 |
| ·中国水仙不同离体形态发生途径遗传变异差异分析 | 第104页 |
| ·中国水仙同一外植体来源的离体培养物其形态与遗传稳定性的关系问题 | 第104-105页 |
| ·细胞水平和分子水平上检测中国水仙离体形态发生遗传变异差异分析 | 第105页 |
| ·中国水仙离体形态发生的遗传变异规律与利用途径的关系 | 第105-106页 |
| 第六章 小结 | 第106-109页 |
| 1 中国水仙高效离体培养体系的建立 | 第106-107页 |
| 2 中国水仙子房切片愈伤组织的细胞组织学观察 | 第107页 |
| 3 中国水仙愈伤组织分化过程中的若干生理变化 | 第107-108页 |
| 4 中国水仙离体形态发生的遗传稳定性检测 | 第108-109页 |
| 参考文献 | 第109-120页 |
| 图版及图版说明 | 第120-140页 |
| 附录 在学期间参加学术会议情况 | 第140-141页 |
| 致谢 | 第141页 |
