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趋化因子CCL2参与调控血小板活化及动脉血栓形成的相关研究

缩略语表第6-8页
中文摘要第8-14页
英文摘要第14-20页
前言第21-25页
文献回顾第25-35页
第一部分 趋化因子CCL2对STEMI患者残余血小板活化的影响及其与患者预后的相关性第35-57页
    1 材料第36-40页
        1.1 研究对象第36页
        1.2 实验材料第36-40页
    2 方法第40-45页
        2.1 临床资料的采集第40页
        2.2 样本的采集第40-41页
        2.3 血浆样本的处理第41页
        2.4 ELISA检测血浆中CCL2水平第41-42页
        2.5 光比浊法检测ADP诱导的人RPA第42页
        2.6 Verifynow法检测PRU和血小板聚集抑制率第42页
        2.7 分离人血小板及提取蛋白第42-43页
        2.8 人血小板蛋白浓度的测定(BCA法)第43页
        2.9 Western Blot检测人血小板内CCL2及CCR2表达第43-44页
        2.10 研究终点第44页
        2.11 统计学分析第44-45页
    3 结果第45-54页
        3.1 80 例服用替格瑞洛患者的临床基线资料及RPA和PRU检测比较第45-48页
        3.2 患者血浆中CCL2浓度的差异及其与RPA的相关性第48-49页
        3.3 患者血小板中CCL2和CCR2的表达差异第49-50页
        3.4 发生MACCE患者与未发生MACCE患者血浆中CCL2浓度差异第50-51页
        3.5 420 例STEMI患者临床基线资料及MACCE情况比较第51-52页
        3.6 患者血浆中CCL2浓度对MACCE的影响第52-54页
    4 讨论第54-57页
第二部分 趋化因子CCL2对血小板内信号通路的活化及调控机制第57-73页
    1 材料第58-61页
        1.1 研究对象第58-59页
        1.2 实验材料第59-61页
    2 方法第61-66页
        2.1 蛋白芯片筛选血小板内发生磷酸化变化的激酶第61-64页
        2.2 Western Blot检测人血小板内P38MAPK和HSP27表达第64页
        2.3 分离小鼠血小板及提取小鼠血小板总蛋白第64-65页
        2.4 BCA法检测小鼠血小板蛋白浓度第65页
        2.5 Western Blot检测小鼠血小板内P38MAPK和HSP27表达第65-66页
        2.6 统计学分析第66页
    3 结果第66-70页
        3.1 人血小板内发生磷酸化变化的激酶第66-67页
        3.2 人血小板内P38MAPK和HSP27的表达变化第67-69页
        3.3 小鼠血小板内P38MAPK和HSP27的表达差异第69-70页
    4 讨论第70-73页
第三部分 趋化因子CCL2对血小板聚集、颗粒分泌和动脉血栓形成的影响第73-88页
    1 材料第74-75页
        1.1 研究对象第74页
        1.2 实验材料第74-75页
    2 方法第75-80页
        2.1 光比浊法检测小鼠血小板聚集率第76页
        2.2 分离小鼠血小板第76-77页
        2.3 ELISA检测小鼠血小板颗粒分泌CD40L的表达第77-78页
        2.4 ELISA检测小鼠血小板颗粒分泌PF4的表达第78-79页
        2.5 检测小鼠血液中血小板和白细胞计数第79页
        2.6 观察小鼠鼠尾出血时间第79页
        2.7 血凝块回缩实验第79-80页
        2.8 制备小鼠颈动脉血栓模型及监测小鼠颈动脉闭塞时间第80页
        2.9 统计学分析第80页
    3 结果第80-85页
        3.1 小鼠血小板聚集率的差异第80-81页
        3.2 小鼠血小板颗粒分泌CD40L和PF4的差异第81-83页
        3.3 小鼠鼠尾出血时间、血凝块回缩和颈动脉闭塞时间的差异第83-85页
    4 讨论第85-88页
小结第88-90页
参考文献第90-105页
个人简历和研究成果第105-106页
致谢第106页

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