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肝纤维化发生发展中肝血窦内皮细胞间质样转分化现象的发现及其调控机制研究

缩略语表第6-9页
中文摘要第9-14页
英文摘要第14-18页
前言第20-22页
文献回顾第22-45页
第一部分 肝纤维化中LSECS间质样转分化现象的发现与验证第45-75页
    1 材料第45-49页
        1.1 小鼠第45-46页
        1.2 主要试剂第46-47页
        1.3 主要仪器第47页
        1.4 PCR引物序列第47-48页
        1.5 主要缓冲液第48-49页
    2 方法第49-56页
        2.1 动物实验及临床样本第49-51页
        2.2 LSECs的分离、培养与鉴定第51-53页
        2.3 免疫荧光染色第53页
        2.4 实时定量PCR第53-54页
        2.5 Western-blot第54-55页
        2.6 全转录组表达谱测序及生物信息学分析第55-56页
        2.7 统计学方法第56页
    3 结果第56-70页
        3.1 野生C57小鼠LSECs的分离和鉴定第56-57页
        3.2 LSECs在体外培养过程中具有发生EnMT的倾向第57-58页
        3.3 CCl4肝纤维化模型中LSECs的EnMT现象第58-64页
        3.4 BDL肝纤维化模型中LSECs的EnMT现象第64-66页
        3.5 在遗传示踪小鼠中验证LSECs的EnMT现象第66-67页
        3.6 在表达谱层面,纤维化后的LSECs呈现肌成纤维母细胞样的表达特征,并与HSCs来源的肌成纤维母细胞存在差异第67-69页
        3.7 在临床肝硬化样本中验证LSECs的EnMT现象第69-70页
    4 讨论第70-75页
第二部分 血管特异性NOTCH信号参与调控肝纤维化过程中LSECS的ENMT第75-90页
    1 材料第75-77页
        1.1 小鼠第75-76页
        1.2 主要试剂第76页
        1.3 主要仪器第76页
        1.4 PCR引物第76-77页
        1.5 主要缓冲液第77页
    2 方法第77-80页
        2.1 动物实验(4 级标题)第77-78页
        2.2 LSECs的分离与培养第78-79页
        2.3 门脉压力检测第79页
        2.4 羟脯氨酸含量测定第79页
        2.5 免疫荧光染色第79页
        2.6 实时定量PCR第79页
        2.7 Western-blot第79页
        2.8 统计学方法第79-80页
    3 结果第80-87页
        3.1 体外转分化及CCl4肝纤维化过程中LSECs Notch信号变化第80-81页
        3.2 血管特异性Notch信号激活加重肝损伤并促进肝纤维进展第81-82页
        3.3 血管特异性Notch信号激活加重LSECs的毛细血管化并促进EnMT的发生第82-83页
        3.4 阻断Notch信号能够抑制LSECs体外培养过程中发生EnMT第83-84页
        3.5 阻断血管特异性Notch信号能够逆转肝纤维化中LSECs的EnMT第84-85页
        3.6 阻断LSECs的毛细血管化能够抑制EnMT的发生并改善肝纤维化第85-87页
    4 讨论第87-90页
小结第90-91页
参考文献第91-106页
个人简历和研究成果第106-108页
致谢第108页

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