| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-13页 |
| 1 前言综述 | 第13-32页 |
| ·鱼类细胞培养概况 | 第13-14页 |
| ·鱼类细胞培养研究进展 | 第14-15页 |
| ·鱼类细胞系在各领域的应用 | 第15-22页 |
| ·鱼类病毒学 | 第16-18页 |
| ·细胞毒理学研究 | 第18-19页 |
| ·细胞免疫学研究 | 第19页 |
| ·细胞内分泌学研究 | 第19-20页 |
| ·细胞遗传学研究 | 第20页 |
| ·细胞在资源保护研究 | 第20-21页 |
| ·细胞在鱼类肿瘤中的研究 | 第21页 |
| ·细胞在鱼类生理学上的研究 | 第21-22页 |
| ·胚胎干细胞概述 | 第22-31页 |
| ·胚胎细胞/胚胎干细胞 | 第22页 |
| ·胚胎干细胞的特点 | 第22-23页 |
| ·胚胎干细胞的生物学特征 | 第23-24页 |
| ·胚胎干细胞的鉴定方法 | 第24-25页 |
| ·胚胎干细胞的研究进展 | 第25-27页 |
| ·胚胎干细胞体外诱导分化研究现状 | 第27-30页 |
| ·胚胎干细胞的应用前景 | 第30-31页 |
| ·本论文的研究目的和意义 | 第31-32页 |
| 2 半滑舌鳎心肌细胞系的建立、鉴定与应用 | 第32-42页 |
| ·引言 | 第32-33页 |
| ·材料和方法 | 第33-36页 |
| ·实验材料 | 第33页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第33页 |
| ·原代培养和继代培养 | 第33页 |
| ·细胞系的保存和冻融 | 第33-34页 |
| ·温度对细胞生长的影响 | 第34页 |
| ·不同浓度FBS 和bFGF 对细胞生长的影响 | 第34页 |
| ·细胞系染色体分析 | 第34-35页 |
| ·含EGFP 质粒转化HTHC 细胞系 | 第35页 |
| ·病毒感染实验 | 第35页 |
| ·透射电镜观察 | 第35-36页 |
| ·实验结果 | 第36-41页 |
| ·半滑舌鳎心肌细胞系的建立 | 第36-37页 |
| ·细胞系的保存和冻融 | 第37页 |
| ·温度对HTHC 细胞生长的影响 | 第37页 |
| ·不同FBS 和bFGF 浓度对细胞生长的影响 | 第37-38页 |
| ·HTHC 染色体核型分析 | 第38-40页 |
| ·EGFP 基因在 HTHC 中的表达 | 第40页 |
| ·LCDV 病毒感染HTHC 细胞 | 第40-41页 |
| ·讨论 | 第41-42页 |
| 3 圆斑星鲽肾脏细胞系的建立及生物学特性研究 | 第42-54页 |
| ·引言 | 第42-44页 |
| ·材料和方法 | 第44-47页 |
| ·实验材料 | 第44页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第44页 |
| ·圆斑星鲽细胞的原代培养和继代培养 | 第44页 |
| ·圆斑星鲽细胞的保存和冻融 | 第44-45页 |
| ·SHKC 细胞生长速度的测定 | 第45页 |
| ·不同温度对 SHKC 生长的影响 | 第45页 |
| ·不同浓度FBS 对细胞生长的影响 | 第45页 |
| ·染色体核型分析 | 第45-46页 |
| ·含EGFP 质粒转化SHKC 细胞系 | 第46页 |
| ·病毒感染实验 | 第46-47页 |
| ·透射电镜观察 | 第47页 |
| ·结果 | 第47-52页 |
| ·圆斑星鲽SHKC 细胞系的建立 | 第47-48页 |
| ·细胞系的保存和冻融 | 第48页 |
| ·圆斑星鲽细胞生长速度的测定 | 第48页 |
| ·不同温度对SHKC 生长的影响 | 第48-49页 |
| ·不同浓度FBS 对SHKC 生长的影响 | 第49-50页 |
| ·染色体核型分析 | 第50-51页 |
| ·EGFP 基因在SHKC 中的表达 | 第51页 |
| ·病毒感染和电镜观察 | 第51-52页 |
| ·讨论 | 第52-54页 |
| 4 日本牙鲆胚胎细胞系的生长特征及初步诱导分化研究 | 第54-64页 |
| ·引言 | 第54-55页 |
| ·材料和方法 | 第55-56页 |
| ·细胞来源及培养基配方 | 第55页 |
| ·细胞的培养 | 第55页 |
| ·视黄酸（RA）诱导FEC 细胞分化 | 第55页 |
| ·明胶诱导FEC 细胞分化 | 第55页 |
| ·低浓度血清诱导FEC 细胞分化 | 第55页 |
| ·低密度种植FEC 细胞诱导FEC 细胞分化 | 第55-56页 |
| ·FEC 细胞碱性磷酸酶活性检测 | 第56页 |
| ·EGFP 报告基因在FEC 细胞中的表达 | 第56页 |
| ·牙鲆淋巴囊肿病毒（LCDV）感染FEC 细胞 | 第56页 |
| ·结果 | 第56-63页 |
| ·视黄酸诱导FEC 细胞分化 | 第56-57页 |
| ·明胶诱导FEC 细胞分化 | 第57-58页 |
| ·低浓度血清诱导FEC 细胞分化 | 第58-59页 |
| ·低密度种植FEC 细胞诱导FEC 细胞的分化 | 第59-61页 |
| ·FEC 细胞碱性磷酸酶活性检测 | 第61页 |
| ·EGFP 报告基因在FEC 细胞中的表达 | 第61-62页 |
| ·牙鲆淋巴囊肿病毒（LCDV）感染FEC 细胞 | 第62-63页 |
| ·讨论 | 第63-64页 |
| 5 半滑舌鳎胚胎细胞系的生长特征及初步诱导分化研究 | 第64-73页 |
| ·引言 | 第64页 |
| ·材料和方法 | 第64-66页 |
| ·细胞来源及培养基配方 | 第64页 |
| ·细胞的培养 | 第64-65页 |
| ·低浓度FBS 和视黄酸（RA）共同诱导HEC 细胞分化 | 第65页 |
| ·二甲基亚砜DMSO 诱导HEC 细胞分化 | 第65页 |
| ·低密度种植HEC 细胞诱导HEC 细胞的分化 | 第65页 |
| ·半滑舌鳎成体鱼内畸形瘤的诱导 | 第65页 |
| ·HEC 细胞碱性磷酸酶活性检测 | 第65-66页 |
| ·EGFP 报告基因在HEC 细胞中的表达 | 第66页 |
| ·牙鲆淋巴囊肿病毒（LCDV）感染HEC 细胞 | 第66页 |
| ·结果 | 第66-72页 |
| ·低浓度FBS 和视黄酸（RA）的共同诱导HEC 细胞分化 | 第66-67页 |
| ·二甲基亚砜DMSO 诱导HEC 细胞分化 | 第67-68页 |
| ·低密度种植HEC 细胞诱导HEC 细胞的分化 | 第68-70页 |
| ·HEC 细胞碱性磷酸酶活性检测 | 第70页 |
| ·EGFP 报告基因在HEC 细胞中的表达 | 第70-71页 |
| ·牙鲆淋巴囊肿病毒（LCDV）感染HEC 细胞 | 第71-72页 |
| ·讨论 | 第72-73页 |
| 6 大菱鲆(Scophthalmus maximus)GRIM19 基因的克隆、鉴定及表达分析 | 第73-101页 |
| ·引言 | 第73-75页 |
| ·材料与方法 | 第75-87页 |
| ·GRIM19 基因cDNA 全长的获得 | 第75-80页 |
| ·大菱鲆GRIM19 基因片段的克隆与分析 | 第80-84页 |
| ·大菱鲆GRIM19 基因RT-PCR 表达分析 | 第84-87页 |
| ·结果及分析 | 第87-99页 |
| ·大菱鲆cDNA 全长的获得 | 第87-91页 |
| ·大菱鲆GRIM19 基因全长的获得 | 第91-96页 |
| ·GRIM19 基因的 RT-PCR 表达分析 | 第96-99页 |
| ·讨论 | 第99-101页 |
| 参考文献 | 第101-111页 |
| 致谢 | 第111-112页 |
| 个人简历 | 第112-113页 |
| 附录 | 第113页 |
