| 缩略语表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-15页 |
| 英文摘要 | 第15-24页 |
| 前言 | 第25-27页 |
| 文献回顾 | 第27-40页 |
| 第一部分 ERS抑制剂PBA通过改善AMI心肌微环境提高移植MSCs的存活率 | 第40-65页 |
| 引言 | 第40-41页 |
| 1 材料 | 第41-43页 |
| 1.1 实验动物 | 第41页 |
| 1.2 试剂和材料 | 第41-42页 |
| 1.3 主要仪器和设备 | 第42-43页 |
| 2 方法 | 第43-52页 |
| 2.1 实验方案 | 第43-44页 |
| 2.2 BMSCs的分离、培养和鉴定 | 第44-45页 |
| 2.3 H/SD细胞模型 | 第45-46页 |
| 2.4 心梗模型 | 第46页 |
| 2.5 BMSCs的生发光成像 | 第46-47页 |
| 2.6 超声心动图 | 第47页 |
| 2.7 细胞因子和氧化应激指标检测 | 第47-48页 |
| 2.8 活性氧(ROS)检测 | 第48页 |
| 2.9 TUNEL染色 | 第48-49页 |
| 2.10 马松染色 | 第49-50页 |
| 2.11 免疫荧光染色 | 第50页 |
| 2.12 蛋白印记检测 | 第50-51页 |
| 2.13 统计学分析 | 第51-52页 |
| 3 结果 | 第52-61页 |
| 3.1 BMSCs的鉴定 | 第52-53页 |
| 3.2 PBA促进移植BMSCs的存活 | 第53-54页 |
| 3.3 PBA抑制心梗后心肌炎症和ROS生成 | 第54-55页 |
| 3.4 PBA联合BMSCs移植抑制细胞凋亡、促进心功能 | 第55-57页 |
| 3.5 PBA抑制心梗后的ERS水平 | 第57-58页 |
| 3.6 PBA联合BMSCs移植抑制心梗后心肌纤维化、促进血管新生 | 第58页 |
| 3.7 PBA抑制H/SD处理BMSCs的细胞凋亡、提高细胞活力 | 第58-59页 |
| 3.8 PBA减轻H/SD处理BMSCs的炎症因子和氧化应激 | 第59-61页 |
| 3.9 PBA减轻H/SD处理BMSCs的炎症和氧化应激水平 | 第61页 |
| 4 讨论 | 第61-65页 |
| 第二部分 褪黑素缓释心脏补片通过提高移植BMSCs存活率促进大鼠AMI后心功能恢复.. | 第65-86页 |
| 引言 | 第65-66页 |
| 1 材料 | 第66-67页 |
| 1.1 实验动物 | 第66页 |
| 1.2 试剂和材料 | 第66-67页 |
| 1.3 仪器和设备 | 第67页 |
| 2 方法 | 第67-76页 |
| 2.1 实验方案 | 第67-68页 |
| 2.2 补片的制备和表征 | 第68-71页 |
| 2.3 BMSCs的H/SD模型 | 第71-72页 |
| 2.4 细胞因子检测 | 第72页 |
| 2.5 BLI检测BMSCs的存活 | 第72-73页 |
| 2.6 动物模型的建立和补片的植入 | 第73-74页 |
| 2.7 超声心动图监测大鼠的心脏结构及功能 | 第74页 |
| 2.8 TUNEL染色 | 第74-75页 |
| 2.9 马松染色 | 第75页 |
| 2.10 免疫荧光染色 | 第75-76页 |
| 2.11 统计学分析 | 第76页 |
| 3 结果 | 第76-83页 |
| 3.1 褪黑素缓释补片可稳定缓释褪黑素 | 第76-77页 |
| 3.2 褪黑素缓释补片可促进BMSCs在H/SD状态下的存活和旁分泌因子水平 | 第77页 |
| 3.3 褪黑素缓释补片可抑制BMSCs在H/SD状态下炎症和氧化应激 | 第77-78页 |
| 3.4 褪黑素缓释补片可促进移植BMSCs的定植和存活 | 第78-79页 |
| 3.5 褪黑素缓释补片联合BMSCs促进AMI后的心功能恢复 | 第79-80页 |
| 3.6 褪黑素缓释补片联合BMSCs抑制左室重塑 | 第80-81页 |
| 3.7 褪黑素缓释补片抑制细胞凋亡 | 第81-82页 |
| 3.8 褪黑素缓释补片联合BMSCs抑制心肌炎症和ROS生成 | 第82页 |
| 3.9 褪黑素缓释补片联合BMSCs抑制心肌纤维化减小心梗面积 | 第82-83页 |
| 3.10 褪黑素缓释补片联合BMSCs促进新生血管形成 | 第83页 |
| 4 讨论 | 第83-86页 |
| 小结 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-95页 |
| 个人简历和研究成果 | 第95-97页 |
| 致谢 | 第97-98页 |
