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双荧光标记的胶质瘤细胞系的构建及其动物模型的优化

摘要第4-6页
Abstract第6-8页
英文名词及缩略词表第9-15页
第一章 绪论第15-22页
    1.1 胶质瘤第15-18页
        1.1.1 胶质瘤概述第15-16页
        1.1.2 胶质瘤临床治疗现状第16-18页
    1.2 胶质瘤动物模型概述第18-20页
        1.2.1 胶质瘤原位裸鼠移植瘤动物模型第19-20页
    1.3 活体成像技术概述第20-21页
        1.3.1 荧光成像技术在胶质瘤动物模型的应用第20-21页
    1.4 本课题研究背景及意义第21-22页
第二章 双荧光标记胶质瘤细胞系的构建第22-44页
    2.1 实验材料第22-24页
        2.1.1 细胞株第22页
        2.1.2 质粒第22页
        2.1.3 试剂及耗材第22-23页
        2.1.4 试剂的配制第23页
        2.1.5 主要仪器第23-24页
    2.2 实验方法第24-34页
        2.2.1 胶质瘤细胞的培养第24-25页
        2.2.2 质粒的扩增第25-30页
        2.2.3 慢病毒的包装第30-31页
        2.2.4 慢病毒感染胶质瘤细胞建立稳转株第31-32页
        2.2.5 细胞的体外发光检测第32页
        2.2.6 荧光细胞与非荧光细胞生物学特性的比较第32-34页
    2.3 实验结果第34-41页
        2.3.1 慢病毒包装结果第34-35页
        2.3.2 慢病毒感染U87、U251、C6胶质瘤细胞,构建稳转细胞株结果第35-36页
        2.3.3 荧光细胞Luciferase体外发光检测第36-37页
        2.3.4 CCK-8细胞增殖实验结果第37-38页
        2.3.5 Transwell细胞迁移实验结果第38-39页
        2.3.6 Transwell细胞侵袭实验结果第39-40页
        2.3.7 细胞周期实验结果第40-41页
    2.4 讨论第41-44页
第三章 胶质瘤原位移植瘤裸鼠模型的建立及比较第44-60页
    3.1 实验材料第44-45页
        3.1.1 实验动物及细胞株第44页
        3.1.2 实验试剂及耗材第44-45页
        3.1.3 主要仪器第45页
    3.2 实验方法第45-49页
        3.2.1 胶质瘤裸鼠原位移植瘤模型的建立第45-46页
        3.2.2 活体成像检测第46页
        3.2.3 体重及生存期监测第46页
        3.2.4 HE切片第46-49页
    3.3 实验结果第49-56页
        3.3.1 模型的建立第49页
        3.3.2 活体成像结果第49-51页
        3.3.3 裸鼠模型生存状况第51-55页
        3.3.4 脑组织形态及病理检测第55-56页
    3.4 讨论第56-60页
全文总结第60-62页
参考文献第62-67页
致谢第67-69页
附录第69页

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