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内源H2O2变化对石竹玻璃化的影响及控制

摘要第2-3页
Abstract第3-4页
引言第9-10页
1 文献综述第10-23页
    1.1 石竹的基本特征和繁殖方式第10-11页
    1.2 植物组织培养过程中玻璃化现象的研究进展第11-15页
        1.2.1 组培苗玻璃化发生的普遍性第11页
        1.2.2 玻璃化苗的形态及显微结构第11页
        1.2.3 玻璃化苗的生理变化第11-12页
        1.2.4 影响组培苗发生玻璃化的因素第12-13页
        1.2.5 组培苗发生玻璃化的机制第13-14页
        1.2.6 防治组培苗玻璃化的措施第14-15页
    1.3 植物活性氧的研究进展第15-20页
        1.3.1 活性氧的种类第15-16页
        1.3.2 植物活性氧的来源第16-17页
        1.3.3 植物活性氧的双重作用第17-18页
        1.3.4 植物活性氧的清除第18-20页
    1.4 硅在植物体内的生理作用及对活性氧的清除第20-21页
        1.4.1 硅元素的分布及植物对硅的吸收、运输第20页
        1.4.2 硅元素的生理作用第20-21页
        1.4.3 硅对活性氧的清除作用第21页
    1.5 本研究的目的、意义和内容第21-23页
2 培养基成分对石竹组培苗玻璃化及质外体H_2O_2含量的影响第23-33页
    2.1 实验材料和试剂第23-24页
        2.1.1 实验材料和培养条件第23页
        2.1.2 实验试剂第23-24页
    2.2 溶液配制第24页
    2.3 实验方法第24-25页
        2.3.1 培养基的配制第24页
        2.3.2 组培苗的培养及玻璃化率的统计第24页
        2.3.3 质外体的提取第24页
        2.3.4 质外体H_2O_2的测定第24-25页
    2.4 结果与分析第25-30页
        2.4.1 培养基pH对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2含量的影响第25-26页
        2.4.2 6-BA对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2含量的影响第26页
        2.4.3 蔗糖对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2含量的影响第26-27页
        2.4.4 结冷胶对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2含量的影响第27-28页
        2.4.5 乙烯对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2含量的影响第28-29页
        2.4.6 ABA对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2含量的影响第29-30页
    2.5 讨论第30-32页
    2.6 小结第32-33页
3 外源活性氧抑制剂/清除剂对石竹组培苗玻璃化的影响第33-41页
    3.1 实验材料和试剂第33页
    3.2 实验方法第33-34页
        3.2.1 培养基的配制及组培苗的培养第33页
        3.2.2 质外体的提取及H_2O_2的测定第33-34页
    3.3 结果与分析第34-39页
        3.3.1 CAT/DPI对石竹组培苗玻璃化率和质外体H_2O_2的影响第34-35页
        3.3.2 VB6对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2的影响第35-36页
        3.3.3 AgNO_3对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2的影响第36-38页
        3.3.4 AsA、GSH对石竹组培苗玻璃化率和质外体H_2O_2的影响第38-39页
    3.4 讨论第39-40页
    3.5 小结第40-41页
4 玻璃化诱导条件下GSH对组培苗ROS生理生化的影响第41-59页
    4.1 实验材料与试剂第41页
        4.1.1 实验材料第41页
        4.1.2 实验试剂第41页
    4.2 实验仪器第41-42页
    4.3 溶液配制第42-43页
    4.4 实验方法第43-50页
        4.4.1 不同培养基的配制第43-44页
        4.4.2 叶绿素含量的测定第44页
        4.4.3 丙二醛(MDA)含量的测定第44-45页
        4.4.4 可溶性蛋白含量的测定第45-46页
        4.4.5 脯氨酸含量的测定第46-47页
        4.4.6 AsA含量的测定第47-48页
        4.4.7 GSH含量的测定第48-49页
        4.4.8 抗坏血酸过氧化物酶(APX)活性测定第49页
        4.4.9 谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)活性测定第49-50页
        4.4.10 H_2O_2和O_2~(·-)的组织化学染色第50页
    4.5 结果与分析第50-56页
        4.5.1 GSH对组培苗生长及叶绿素含量的影响第50-52页
        4.5.2 GSH对组培苗叶片MDA含量的影响第52页
        4.5.3 GSH对组培苗脯氨酸含量的影响第52-53页
        4.5.4 GSH对组培苗可溶性蛋白含量的影响第53-54页
        4.5.5 GSH对组培苗AsA-GSH循环的影响第54-56页
        4.5.6 GSH对组培苗H_2O_2和O_2~(·-)积累的影响第56页
    4.6 讨论第56-58页
    4.7 小结第58-59页
5 硅酸钾对玻璃化苗的恢复作用第59-69页
    5.1 实验材料和试剂第59页
        5.1.1 实验材料第59页
        5.1.2 实验试剂第59页
    5.2 实验仪器第59页
    5.3 溶液配制第59-60页
    5.4 实验方法第60-63页
        5.4.1 培养基的配制第60页
        5.4.2 组培苗干重及水分含量测定第60-61页
        5.4.3 组培苗苯丙氨酸解氨酶(PAL)及抗氧化酶活性测定第61-63页
        5.4.4 组培苗叶绿素及H_2O_2和O_2~(·-)的组织化学染色第63页
    5.5 结果与分析第63-67页
        5.5.1 硅酸钾对玻璃化组培苗生长状况及叶绿素的影响第63-64页
        5.5.2 硅酸钾对玻璃化组培苗水分含量及干重的影响第64-65页
        5.5.3 硅酸钾对玻璃化组培苗PAL及抗氧化酶活性的影响第65-66页
        5.5.4 硅酸钾对玻璃化组培苗H_2O_2和O_2~(·-)积累的影响第66-67页
    5.6 讨论第67-68页
    5.7 小结第68-69页
结论第69-70页
展望第70-71页
参考文献第71-77页
攻读硕士学位期间发表学术论文情况第77-78页
致谢第78-80页

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