摘要 | 第2-3页 |
Abstract | 第3-4页 |
引言 | 第9-10页 |
1 文献综述 | 第10-23页 |
1.1 石竹的基本特征和繁殖方式 | 第10-11页 |
1.2 植物组织培养过程中玻璃化现象的研究进展 | 第11-15页 |
1.2.1 组培苗玻璃化发生的普遍性 | 第11页 |
1.2.2 玻璃化苗的形态及显微结构 | 第11页 |
1.2.3 玻璃化苗的生理变化 | 第11-12页 |
1.2.4 影响组培苗发生玻璃化的因素 | 第12-13页 |
1.2.5 组培苗发生玻璃化的机制 | 第13-14页 |
1.2.6 防治组培苗玻璃化的措施 | 第14-15页 |
1.3 植物活性氧的研究进展 | 第15-20页 |
1.3.1 活性氧的种类 | 第15-16页 |
1.3.2 植物活性氧的来源 | 第16-17页 |
1.3.3 植物活性氧的双重作用 | 第17-18页 |
1.3.4 植物活性氧的清除 | 第18-20页 |
1.4 硅在植物体内的生理作用及对活性氧的清除 | 第20-21页 |
1.4.1 硅元素的分布及植物对硅的吸收、运输 | 第20页 |
1.4.2 硅元素的生理作用 | 第20-21页 |
1.4.3 硅对活性氧的清除作用 | 第21页 |
1.5 本研究的目的、意义和内容 | 第21-23页 |
2 培养基成分对石竹组培苗玻璃化及质外体H_2O_2含量的影响 | 第23-33页 |
2.1 实验材料和试剂 | 第23-24页 |
2.1.1 实验材料和培养条件 | 第23页 |
2.1.2 实验试剂 | 第23-24页 |
2.2 溶液配制 | 第24页 |
2.3 实验方法 | 第24-25页 |
2.3.1 培养基的配制 | 第24页 |
2.3.2 组培苗的培养及玻璃化率的统计 | 第24页 |
2.3.3 质外体的提取 | 第24页 |
2.3.4 质外体H_2O_2的测定 | 第24-25页 |
2.4 结果与分析 | 第25-30页 |
2.4.1 培养基pH对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2含量的影响 | 第25-26页 |
2.4.2 6-BA对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2含量的影响 | 第26页 |
2.4.3 蔗糖对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2含量的影响 | 第26-27页 |
2.4.4 结冷胶对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2含量的影响 | 第27-28页 |
2.4.5 乙烯对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2含量的影响 | 第28-29页 |
2.4.6 ABA对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2含量的影响 | 第29-30页 |
2.5 讨论 | 第30-32页 |
2.6 小结 | 第32-33页 |
3 外源活性氧抑制剂/清除剂对石竹组培苗玻璃化的影响 | 第33-41页 |
3.1 实验材料和试剂 | 第33页 |
3.2 实验方法 | 第33-34页 |
3.2.1 培养基的配制及组培苗的培养 | 第33页 |
3.2.2 质外体的提取及H_2O_2的测定 | 第33-34页 |
3.3 结果与分析 | 第34-39页 |
3.3.1 CAT/DPI对石竹组培苗玻璃化率和质外体H_2O_2的影响 | 第34-35页 |
3.3.2 VB6对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2的影响 | 第35-36页 |
3.3.3 AgNO_3对石竹组培苗玻璃化率及质外体H_2O_2的影响 | 第36-38页 |
3.3.4 AsA、GSH对石竹组培苗玻璃化率和质外体H_2O_2的影响 | 第38-39页 |
3.4 讨论 | 第39-40页 |
3.5 小结 | 第40-41页 |
4 玻璃化诱导条件下GSH对组培苗ROS生理生化的影响 | 第41-59页 |
4.1 实验材料与试剂 | 第41页 |
4.1.1 实验材料 | 第41页 |
4.1.2 实验试剂 | 第41页 |
4.2 实验仪器 | 第41-42页 |
4.3 溶液配制 | 第42-43页 |
4.4 实验方法 | 第43-50页 |
4.4.1 不同培养基的配制 | 第43-44页 |
4.4.2 叶绿素含量的测定 | 第44页 |
4.4.3 丙二醛(MDA)含量的测定 | 第44-45页 |
4.4.4 可溶性蛋白含量的测定 | 第45-46页 |
4.4.5 脯氨酸含量的测定 | 第46-47页 |
4.4.6 AsA含量的测定 | 第47-48页 |
4.4.7 GSH含量的测定 | 第48-49页 |
4.4.8 抗坏血酸过氧化物酶(APX)活性测定 | 第49页 |
4.4.9 谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)活性测定 | 第49-50页 |
4.4.10 H_2O_2和O_2~(·-)的组织化学染色 | 第50页 |
4.5 结果与分析 | 第50-56页 |
4.5.1 GSH对组培苗生长及叶绿素含量的影响 | 第50-52页 |
4.5.2 GSH对组培苗叶片MDA含量的影响 | 第52页 |
4.5.3 GSH对组培苗脯氨酸含量的影响 | 第52-53页 |
4.5.4 GSH对组培苗可溶性蛋白含量的影响 | 第53-54页 |
4.5.5 GSH对组培苗AsA-GSH循环的影响 | 第54-56页 |
4.5.6 GSH对组培苗H_2O_2和O_2~(·-)积累的影响 | 第56页 |
4.6 讨论 | 第56-58页 |
4.7 小结 | 第58-59页 |
5 硅酸钾对玻璃化苗的恢复作用 | 第59-69页 |
5.1 实验材料和试剂 | 第59页 |
5.1.1 实验材料 | 第59页 |
5.1.2 实验试剂 | 第59页 |
5.2 实验仪器 | 第59页 |
5.3 溶液配制 | 第59-60页 |
5.4 实验方法 | 第60-63页 |
5.4.1 培养基的配制 | 第60页 |
5.4.2 组培苗干重及水分含量测定 | 第60-61页 |
5.4.3 组培苗苯丙氨酸解氨酶(PAL)及抗氧化酶活性测定 | 第61-63页 |
5.4.4 组培苗叶绿素及H_2O_2和O_2~(·-)的组织化学染色 | 第63页 |
5.5 结果与分析 | 第63-67页 |
5.5.1 硅酸钾对玻璃化组培苗生长状况及叶绿素的影响 | 第63-64页 |
5.5.2 硅酸钾对玻璃化组培苗水分含量及干重的影响 | 第64-65页 |
5.5.3 硅酸钾对玻璃化组培苗PAL及抗氧化酶活性的影响 | 第65-66页 |
5.5.4 硅酸钾对玻璃化组培苗H_2O_2和O_2~(·-)积累的影响 | 第66-67页 |
5.6 讨论 | 第67-68页 |
5.7 小结 | 第68-69页 |
结论 | 第69-70页 |
展望 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-77页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第77-78页 |
致谢 | 第78-80页 |