| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 研究现状和成果 | 第14-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-17页 |
| 一、BBR缓解ConA介导的小鼠肝损伤 | 第17-26页 |
| 1.1 对象和方法 | 第18-21页 |
| 1.1.1 实验对象 | 第18页 |
| 1.1.2 主要试剂和仪器设备 | 第18-19页 |
| 1.1.3 主要溶剂的配置 | 第19页 |
| 1.1.4 实验方法 | 第19-21页 |
| 1.1.5 统计学方法 | 第21页 |
| 1.2 结果 | 第21-23页 |
| 1.2.1 各组小鼠血浆ALT、AST水平的变化 | 第21-22页 |
| 1.2.2 各组小鼠组织形态学的变化 | 第22-23页 |
| 1.3 讨论 | 第23-25页 |
| 1.4 小结 | 第25-26页 |
| 二、ConA介导的小鼠肝损伤时炎症因子的变化及BBR对炎症因子的影响 | 第26-40页 |
| 2.1 对象和方法 | 第27-32页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第27页 |
| 2.1.2 主要试剂及仪器设备 | 第27-28页 |
| 2.1.3 主要溶剂的配置 | 第28页 |
| 2.1.4 实验方法 | 第28-32页 |
| 2.1.5 统计学方法 | 第32页 |
| 2.2 结果 | 第32-37页 |
| 2.2.1 酶联免疫法检测血浆炎症因子IL-1β、IL-2、TNF-α、IFN-γ及IL-10水平的变化 | 第32-34页 |
| 2.2.2 RT-PCR方法检测各组小鼠肝组织中炎症因子IL-1β、IL-2、TNF-α、IFN-γ及IL-10水平的变化 | 第34-37页 |
| 2.3 讨论 | 第37-39页 |
| 2.4 小结 | 第39-40页 |
| 三、BBR通过磷酸化AMPK及下游产物ACC,发挥对于ConA小鼠的肝损伤保护作用 | 第40-50页 |
| 3.1 对象和方法 | 第40-47页 |
| 3.1.1 实验对象 | 第40页 |
| 3.1.2 主要试剂及仪器设备 | 第40-43页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第43-46页 |
| 3.1.4 统计学方法 | 第46-47页 |
| 3.2 结果 | 第47-48页 |
| 3.2.1 WesternBlot检测不同剂量BBR小鼠肝组织内tACC/pACC的变化 | 第47页 |
| 3.2.2 WesternBlot检测BBR联合或不联合CompoundC小鼠肝组织内tACC/pACC的变化 | 第47-48页 |
| 3.3 讨论 | 第48-49页 |
| 3.4 小结 | 第49-50页 |
| 四、AMPK的抑制剂CompondC可以通过炎症因子的变化阻断BBR对于ConA小鼠肝脏的保护作用 | 第50-65页 |
| 4.1 对象和方法 | 第50-57页 |
| 4.1.1 实验对象 | 第50页 |
| 4.1.2 主要试剂及仪器设备 | 第50-52页 |
| 4.1.3 主要溶液的配置 | 第52页 |
| 4.1.4 实验方法 | 第52-57页 |
| 4.1.5 统计学方法 | 第57页 |
| 4.2 结果 | 第57-62页 |
| 4.2.1 各组小鼠血浆ALT、AST水平的变化 | 第57页 |
| 4.2.2 HE染色观察肝组织学变化 | 第57-58页 |
| 4.2.3 酶联免疫法检测血浆炎症因子IL-1β、IL-2、TNF-α、IFN-γ及IL-10水平的变化 | 第58-60页 |
| 4.2.4 实时定量PCR方法检测各组小鼠肝组织中炎症因子IL-1β、IL-2、TNF-α、IFN-γ及 IL-10 水平的变化 | 第60-62页 |
| 4.3 讨论 | 第62-64页 |
| 4.4 小结 | 第64-65页 |
| 五、不同剂量的AICAR对于AMPK的激活 | 第65-74页 |
| 5.1 对象和方法 | 第65-71页 |
| 5.1.1 实验对象 | 第65页 |
| 5.1.2 主要试剂及仪器设备 | 第65-68页 |
| 5.1.3 实验方法 | 第68-71页 |
| 5.1.4 统计学方法 | 第71页 |
| 5.2 结果 | 第71-72页 |
| 5.2.1 Westernblot检测不同剂量AICAR小鼠肝组织内pACC/tACC的变化 | 第71-72页 |
| 5.3 讨论 | 第72-73页 |
| 5.4 小结 | 第73-74页 |
| 六、AICAR缓解ConA介导的小鼠免疫性肝损伤 | 第74-82页 |
| 6.1 对象和方法 | 第74-77页 |
| 6.1.1 实验对象 | 第74页 |
| 6.1.2 主要试剂和仪器设备 | 第74-75页 |
| 6.1.3 主要溶剂的配置 | 第75页 |
| 6.1.4 实验方法 | 第75-77页 |
| 6.1.5 统计学方法 | 第77页 |
| 6.2 结果 | 第77-79页 |
| 6.2.1 各组小鼠血浆ALT、AST水平的变化 | 第77-78页 |
| 6.2.2 各组小鼠肝组织形态学的变化 | 第78-79页 |
| 6.3 讨论 | 第79-81页 |
| 6.4 小结 | 第81-82页 |
| 七、AICAR对ConA小鼠肝损伤炎症因子的影响 | 第82-95页 |
| 7.1 对象和方法 | 第82-87页 |
| 7.1.1 实验对象 | 第82页 |
| 7.1.2 主要试剂及仪器设备 | 第82-83页 |
| 7.1.3 主要溶剂的配置 | 第83-84页 |
| 7.1.4 实验方法 | 第84-87页 |
| 7.1.5 统计学方法 | 第87页 |
| 7.2 结果 | 第87-93页 |
| 7.2.1 酶联免疫法检测血浆炎症因子IL-1β、IL-2、TNF-α、IFN-γ及IL-10水平的变化 | 第87-90页 |
| 7.2.2 实时定量PCR方法检测各组小鼠肝组织中炎症因子IL-1β、IL-2、TNF-α、IFN-γ及IL-10水平的变化 | 第90-93页 |
| 7.3 讨论 | 第93-94页 |
| 7.4 小结 | 第94-95页 |
| 全文结论 | 第95-97页 |
| 论文创新点 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-108页 |
| 发表论文及参加科研情况说明 | 第108-109页 |
| 综述 自身免疫性肝炎与泛素化 | 第109-115页 |
| 综述参考文献 | 第113-115页 |
| 致谢 | 第115-116页 |
| 个人简历 | 第116页 |
