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OPCML在胃癌中的表达及对胃癌细胞生物学的作用

中文摘要第3-5页
英文摘要第5-6页
中英文对照缩略词表第7-9页
前言第9-14页
1 实验材料第14-19页
    1.1 细胞和组织来源第14页
    1.2 质粒与菌种第14页
    1.3 引物第14页
    1.4 主要试剂第14-16页
    1.5 主要溶液配制第16页
    1.6 主要仪器与设备第16-18页
    1.7 技术路线图第18-19页
2 实验方法第19-30页
    2.1 免疫组化操作步骤第19页
    2.2 免疫组织化学结果判定标准第19-20页
    2.3 细胞复苏第20页
    2.4 细胞传代第20页
    2.5 细胞冻存第20-21页
    2.6 质粒 DNA 的转化第21页
    2.7 质粒扩增第21页
    2.8 质粒的提取第21-22页
    2.9 细胞转染第22-23页
    2.10 G418 筛选稳定表达细胞系第23页
    2.11 RNA 的提取第23页
    2.12 分光光度计检测 RNA 的浓度、纯度第23-24页
    2.13 总 RNA 的逆转录第24页
    2.14 PCR 反应第24-25页
    2.15 PCR 扩增产物分析第25页
    2.16 蛋白的提取第25页
    2.17 蛋白浓度的测定(BCA 法)第25-26页
    2.18 Western blot 实验第26-28页
    2.19 细胞平板克隆形成实验第28页
    2.20 细胞生长曲线第28-29页
    2.21 软琼脂实验第29页
    2.22 细胞迁移能力检测(划痕实验)第29-30页
3 结果第30-41页
    3.1 OPCML在人胃癌组织和癌旁组织表达的情况第30页
    3.2 胃癌组织中OPCML蛋白表达情况与胃癌组织临床病理特征的关系第30-31页
    3.3 OPCML的表达与胃癌患者生存率的关系第31-32页
    3.4 OPCML在正常胃粘膜和胃癌细胞中的m RNA表达水平第32-33页
    3.5 OPCML转染水平的鉴定第33-34页
    3.6 AGS细胞的G418最佳筛选浓度第34-36页
    3.7 OPCML基因对AGS克隆形成能力的影响第36-37页
    3.8 OPCML基因对AGS细胞增值能力的抑制第37页
    3.9 软琼脂实验结果分析第37-39页
    3.10 OPCML对AGS细胞迁移能力的影响第39-41页
讨论第41-45页
结论第45-46页
展望第46-47页
研究的创新点第47-48页
参考文献第48-54页
硕士期间发表的论文第54-55页
致谢第55页

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