| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一部分 人参皂苷组合转化组分对肿瘤细胞抑制作用 | 第8-19页 |
| 1. 前言 | 第8页 |
| 2. 仪器和材料 | 第8-9页 |
| 2.1 实验对象 | 第8页 |
| 2.2 主要实验仪器 | 第8-9页 |
| 2.3 主要药品试剂 | 第9页 |
| 3. 实验方法 | 第9-12页 |
| 3.1 细胞培养 | 第9-10页 |
| 3.2 MTT法检测样品A对肝癌细胞HepG2的抑制作用 | 第10-11页 |
| 3.3 实验数据处理与统计分析 | 第11-12页 |
| 4. 实验结果与分析 | 第12-17页 |
| 4.1 MTT法检测样品A对HepG2细胞的抑制作用 | 第12-13页 |
| 4.2 MTT法检测样品A对MGC-803细胞的抑制作用 | 第13-14页 |
| 4.3 MTT法检测样品A对SGC-7901细胞的抑制作用 | 第14-15页 |
| 4.4 MTT法检测样品A对Hela细胞的抑制作用 | 第15-16页 |
| 4.5 MTT法检测样品A对Caski细胞的抑制作用 | 第16-17页 |
| 5. 讨论 | 第17-18页 |
| 6. 结论 | 第18-19页 |
| 第二部分 人参皂苷组合转化组分对HepG2细胞凋亡的影响 | 第19-35页 |
| 1. 前言 | 第19页 |
| 2. 仪器和材料 | 第19-20页 |
| 2.1 实验对象 | 第19页 |
| 2.2 主要实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.3 主要药品试剂 | 第20页 |
| 3. 实验方法 | 第20-25页 |
| 3.1 实验分组 | 第20-21页 |
| 3.2 细胞形态学观察 | 第21页 |
| 3.3 流式Annexin V-FITC/PI双染法检测细胞凋亡 | 第21-22页 |
| 3.4 流式PI单染法检测细胞周期 | 第22-23页 |
| 3.5 Western blot法检测人肝癌HepG2细胞Bax、Bcl-2蛋白的表达 | 第23-25页 |
| 3.6 实验数据处理与统计分析 | 第25页 |
| 4. 实验结果与分析 | 第25-32页 |
| 4.1 细胞形态学观察 | 第25-28页 |
| 4.2 流式Annexin V-FITC/PI双染技术检测各组细胞的凋亡情况 | 第28-30页 |
| 4.3 流式PI单染技术检测细胞周期的变化 | 第30-32页 |
| 4.4 Western blot技术检测样品A与顺铂对HepG2中Bcl-2、Bax两种凋亡相关蛋白表达的影响 | 第32页 |
| 5. 讨论 | 第32-34页 |
| 6. 结论 | 第34-35页 |
| 第三部分 综述人参皂苷转化物的抗肿瘤活性研究 | 第35-44页 |
| 1. 人参皂苷转化物 | 第35-40页 |
| 1.1 人参皂苷 | 第35-36页 |
| 1.2 人参皂苷转化的目的与意义 | 第36页 |
| 1.3 常用人参皂苷转化方法 | 第36-40页 |
| 2. 人参皂苷转化物的抗肿瘤活性 | 第40-42页 |
| 2.1 人参皂苷CK抗肿瘤作用 | 第40页 |
| 2.2 人参皂苷Rg3抗肿瘤作用 | 第40-41页 |
| 2.3 人参皂苷Rh2抗肿瘤作用 | 第41-42页 |
| 2.4 人参皂苷Rg1抗肿瘤作用 | 第42页 |
| 2.5 人参皂苷Rg5抗肿瘤作用 | 第42页 |
| 2.6 人参皂苷Rb1抗肿瘤作用 | 第42页 |
| 3. 人参皂苷转化物前景展望 | 第42-44页 |
| 结果与讨论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第50-51页 |
