| 中文摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 第一部分 PAR2和TMEM16A在CCI模型鼠DRG神经元上的表达 | 第13-26页 |
| 材料与方法 | 第13-20页 |
| 1 材料 | 第13-15页 |
| 1.1 主要实验仪器 | 第13-14页 |
| 1.2 实验试剂 | 第14页 |
| 1.3 主要实验试剂配制 | 第14-15页 |
| 1.4 实验动物和实验分组 | 第15页 |
| 2 方法 | 第15-20页 |
| 2.1 制备大鼠CCI模型 | 第15页 |
| 2.2 热缩足反射测定 | 第15-16页 |
| 2.3 DRG神经元的制备方法 | 第16页 |
| 2.4 免疫荧光染色检测PAR2和TMEM16A的表达 | 第16-17页 |
| 2.5 蛋白提取的基本方法 | 第17页 |
| 2.6 WesternBlot实验步骤 | 第17-18页 |
| 2.7 ELISA检测大鼠背根神经节神经元IP3的浓度 | 第18-19页 |
| 2.8 统计学分析 | 第19-20页 |
| 结果 | 第20-26页 |
| 1 大鼠痛行为学的表现 | 第20页 |
| 2 大鼠热痛阈的测试结果 | 第20-21页 |
| 3 PAR2和TMEM16A免疫荧光染色结果 | 第21-24页 |
| 4 PAR2和TMEM16A免疫蛋白印迹定性、定量检测结果 | 第24页 |
| 5 背根神经节神经元IP3的浓度 | 第24-26页 |
| 第二部分 PAR2激活剂对CCI模型鼠DRG神经元钙离子浓度的影响 | 第26-35页 |
| 材料与方法 | 第26-30页 |
| 1 材料 | 第26-27页 |
| 1.1 主要实验仪器 | 第26页 |
| 1.2 实验试剂 | 第26页 |
| 1.3 主要实验试剂配制 | 第26-27页 |
| 1.4 实验动物及分组 | 第27页 |
| 2 方法 | 第27-30页 |
| 2.1 鞘内注射药物普瑞巴林 | 第27-28页 |
| 2.2 大鼠DRG细胞的急性分离 | 第28页 |
| 2.3 钙离子成像技术 | 第28-29页 |
| 2.4 全细胞膜片技术记录动作电位 | 第29页 |
| 2.5 统计学分析 | 第29-30页 |
| 结果 | 第30-35页 |
| 1 大鼠DRG神经元钙离子浓度检测 | 第30-31页 |
| 2 PAR2激活剂SLIGRL-NH2对DRG神经元钙离子浓度的影响 | 第31-32页 |
| 3 大鼠DRG神经元动作电位的改变 | 第32页 |
| 4 大鼠DRG神经元动作电位阈值的变化 | 第32-33页 |
| 5 大鼠DRG神经元动作电位频率的变化 | 第33-35页 |
| 讨论 | 第35-38页 |
| 结论及展望 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-43页 |
| 文献综述 | 第43-50页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 作者简介 | 第51-52页 |
| 导师评阅表 | 第52页 |
