缩略语表 | 第5-6页 |
中文摘要 | 第6-7页 |
ABSTRACT | 第7-8页 |
前言 | 第9-11页 |
文献综述 | 第11-22页 |
1. 中药多糖抗肿瘤的作用机制研究进展 | 第11-16页 |
1.1 增强机体免疫能力 | 第11-12页 |
1.1.1 增强免疫细胞活性 | 第11-12页 |
1.1.2 提高免疫因子活性 | 第12页 |
1.2 影响肿瘤细胞膜生长特性 | 第12-13页 |
1.3 抑制肿瘤细胞增殖与诱导肿瘤细胞凋亡 | 第13-14页 |
1.3.1 阻滞肿瘤细胞增殖周期 | 第13-14页 |
1.3.2 抑制端粒酶活性 | 第14页 |
1.3.3 调控癌基因和抑癌基因表达 | 第14页 |
1.4 影响细胞凋亡信号转导 | 第14-15页 |
1.5 抑制肿瘤侵袭和转移 | 第15页 |
1.6 清除自由基 | 第15-16页 |
2. 细胞凋亡与调控基因 | 第16-18页 |
2.1 细胞凋亡 | 第16页 |
2.2 Bcl-2研究进展 | 第16-17页 |
2.3 Caspase家族研究进展 | 第17-18页 |
3. 蛹虫草多糖的研究进展 | 第18-22页 |
3.1 蛹虫草多糖简介 | 第18页 |
3.2 蛹虫草多糖提取方法 | 第18-19页 |
3.3 蛹虫草多糖生物活性 | 第19-22页 |
3.3.1 蛹虫草多糖抗氧化活性 | 第19页 |
3.3.2 蛹虫草多糖护肝作用 | 第19页 |
3.3.3 蛹虫草多糖免疫调节作用 | 第19-20页 |
3.3.4 蛹虫草多糖抗肿瘤作用 | 第20-22页 |
实验研究 | 第22-32页 |
1. 实验材料 | 第22-25页 |
1.1 实验细胞及动物 | 第22页 |
1.2 主要实验仪器 | 第22-23页 |
1.3 实验药物 | 第23页 |
1.4 主要实验试剂 | 第23页 |
1.5 主要试剂配制 | 第23-25页 |
2. 试验方法 | 第25-32页 |
2.1 小鼠肝癌H22细胞培养 | 第25页 |
2.2 H22肝癌细胞皮下移植瘤模型的建立 | 第25页 |
2.3 实验动物分组 | 第25-26页 |
2.4 动物处死及取材 | 第26页 |
2.5 胸腺指数、脾脏指数的测定 | 第26页 |
2.6 HE染色 | 第26-27页 |
2.6.1 制作石蜡切片 | 第26页 |
2.6.2 HE染色 | 第26-27页 |
2.7 半定量RT-PCR检测mRNA表达水平 | 第27-29页 |
2.7.1 H22肝癌肿瘤组织总RNA提取 | 第27页 |
2.7.2 RNA浓度和纯度测定 | 第27页 |
2.7.3 引物序列设计 | 第27-28页 |
2.7.4 RNA逆转录 | 第28页 |
2.7.5 PCR反应 | 第28-29页 |
2.7.6 琼脂糖凝胶电泳 | 第29页 |
2.7.7 凝胶成像结果分析 | 第29页 |
2.8 Western Blot检测蛋白表达水平 | 第29-31页 |
2.8.1 H22肝癌肿瘤组织总蛋白提取 | 第29-30页 |
2.8.2 BCA法定量组织总蛋白 | 第30页 |
2.8.3 聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)凝胶电泳 | 第30-31页 |
2.8.4 转膜 | 第31页 |
2.8.5 封闭 | 第31页 |
2.8.6 免疫印迹杂交检测Bcl2、Bax以及Cleaved-Caspase-3蛋白表达量 | 第31页 |
2.8.7 显色及凝胶图像分析 | 第31页 |
2.9 统计学方法 | 第31-32页 |
结果 | 第32-39页 |
1. 蛹虫草多糖对H22荷瘤小鼠胸腺指数和脾指数的影响 | 第32页 |
2. HE染色 | 第32-34页 |
3. RT-PCR检测蛹虫草多糖对H22荷瘤小鼠Bcl2、BaxmRNA表达水平的影响 | 第34-35页 |
4. Western Blot检测蛹虫草多糖对H22荷瘤小鼠Bcl-2、Bax蛋白表达的影响 | 第35-37页 |
5. Western Blot检测蛹虫草多糖对H22荷瘤小鼠活化的Cleaved-Caspase-3蛋白表达的影响 | 第37-39页 |
讨论 | 第39-44页 |
结论 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-51页 |
致谢 | 第51-52页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第52-54页 |
个人简历 | 第54页 |