| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 插图索引 | 第10-11页 |
| 附表索引 | 第11-12页 |
| 缩略词 | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-25页 |
| 1.1 植物蛋白激酶 | 第13-14页 |
| 1.1.1 植物蛋白激酶的分类 | 第13页 |
| 1.1.2 植物蛋白激酶的结构 | 第13-14页 |
| 1.1.3 植物蛋白激酶的生理功能 | 第14页 |
| 1.2 植物酪蛋白激酶 | 第14-17页 |
| 1.2.1 植物酪蛋白激酶 CK1 | 第15-16页 |
| 1.2.2 植物酪蛋白激酶 CK2 | 第16-17页 |
| 1.3 ABA 与植物抗逆性 | 第17-18页 |
| 1.3.1 ABA 与植物抗冻性 | 第17页 |
| 1.3.2 ABA 与植物抗盐性 | 第17页 |
| 1.3.3 ABA 与植物抗虫性 | 第17-18页 |
| 1.3.4 ABA 与植物抗旱性 | 第18页 |
| 1.4 植物耐热性的研究 | 第18页 |
| 1.5 逆向信号通路 | 第18-21页 |
| 1.5.1 线粒体逆向信号途径 | 第19页 |
| 1.5.2 叶绿体逆向信号途径 | 第19-21页 |
| 1.6 质体蛋白激酶 CK2 的研究现状 | 第21-24页 |
| 1.7 本论文的目的、意义以及内容 | 第24-25页 |
| 第2章 质体酪蛋白 CKA4 缺失突变体的鉴定以及生物信息学分析 | 第25-35页 |
| 2.1 实验材料、试剂与仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第26页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第26页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-29页 |
| 2.2.1 种子的春化与播种 | 第27页 |
| 2.2.2 基因组 DNA 提取 | 第27页 |
| 2.2.3 总 RNA 提取 | 第27-28页 |
| 2.2.4 逆转录 cDNA | 第28页 |
| 2.2.5 cDNA 模板的检测 | 第28页 |
| 2.2.6 实时荧光定量 PCR | 第28-29页 |
| 2.2.7 三引物法鉴定纯合子和纯合子的验证 | 第29页 |
| 2.3 实验结果 | 第29-34页 |
| 2.3.1 三引物法鉴定纯合子和纯合子的验证 | 第29-31页 |
| 2.3.2 CKA4 基因的生物信息学分析 | 第31-34页 |
| 2.4 讨论 | 第34页 |
| 2.5 本章小结 | 第34-35页 |
| 第3章 质体酪蛋白激酶 CKA4 缺失突变体降低 ABA 敏感性的研究 | 第35-46页 |
| 3.1 实验材料、试剂与仪器 | 第35页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第35页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第35页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-38页 |
| 3.2.1 种子的春化 | 第35页 |
| 3.2.2 萌发率处理 | 第35-36页 |
| 3.2.3 气孔、失水率的测量和干旱胁迫处理 | 第36-37页 |
| 3.2.4 內源 ABA 含量的测定 | 第37页 |
| 3.2.5 ABA 影响下根长的测量 | 第37页 |
| 3.2.6 CKA4 基因和 ABA 信号通路相关基因的表达 | 第37-38页 |
| 3.3 实验结果 | 第38-44页 |
| 3.3.1 ABA、NaCl 和甘露醇胁迫下野生型和突变体种子萌发率比较 | 第38-40页 |
| 3.3.2 野生型和突变体植株的叶片气孔、失水率和內源 ABA 含量的测定 | 第40-42页 |
| 3.3.3 野生型和突变体在外源 ABA 响应下的根长变化 | 第42-43页 |
| 3.3.4 CKA4 基因和 ABA 信号通路相关基因的表达分析 | 第43-44页 |
| 3.4 讨论 | 第44-45页 |
| 3.5 本章小结 | 第45-46页 |
| 第4章 质体酪蛋白激酶 CKA4 缺失突变体降低耐热性的研究 | 第46-59页 |
| 4.1 实验材料、试剂与仪器 | 第46页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第46页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第46页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第46页 |
| 4.2 实验方法 | 第46-49页 |
| 4.2.1 种子的春化与播种 | 第46页 |
| 4.2.2 幼苗存活率和种子萌发率 | 第46-47页 |
| 4.2.3 根长和下胚轴的热胁迫处理 | 第47页 |
| 4.2.4 脯氨酸和丙二醛的提取与含量测定 | 第47-48页 |
| 4.2.5 热胁迫引起 CKA4 基因和热诱导基因表达的变化 | 第48-49页 |
| 4.3 实验结果 | 第49-57页 |
| 4.3.1 热胁迫后的萌发率与存活率 | 第49-51页 |
| 4.3.2 热胁迫后根长和下胚轴长度的变化 | 第51-52页 |
| 4.3.3 脯氨酸和丙二醛的提取与含量测定 | 第52-54页 |
| 4.3.4 热胁迫引起的 CKA4 基因和热诱导基因表达的变化 | 第54-57页 |
| 4.4 讨论 | 第57-58页 |
| 4.5 本章小结 | 第58-59页 |
| 第5章 质体蛋白激酶 CKA4 调控细胞核—叶绿体逆行信号通路 | 第59-66页 |
| 5.1 实验材料、试剂与仪器 | 第59-60页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第59页 |
| 5.1.2 实验试剂 | 第59页 |
| 5.1.3 实验仪器 | 第59-60页 |
| 5.2 实验方法 | 第60-61页 |
| 5.2.1 逆行信号途径中关键基因和 PEP 靶基因的表达分析 | 第60页 |
| 5.2.2 生物量的相对分析以及叶绿体超微结构观察 | 第60-61页 |
| 5.3 实验结果 | 第61-64页 |
| 5.3.1 逆行信号途径中关键基因和 PEP 靶基因的表达分析 | 第61-62页 |
| 5.3.2 生物量的相对分析以及叶绿体超微结构观察 | 第62-64页 |
| 5.4 讨论 | 第64-65页 |
| 5.5 本章小结 | 第65-66页 |
| 结论 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-76页 |
| 附录 | 第76-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
