| 中文摘要 | 第5-10页 |
| Abstract | 第10-15页 |
| 序论 | 第16-20页 |
| 1 实验材料及方法 | 第20-29页 |
| 1.1 实验材料 | 第20-23页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第20页 |
| 1.1.2 实验主要所需试剂和生产厂家 | 第20-21页 |
| 1.1.3 实验主要所需仪器及生产厂家 | 第21-22页 |
| 1.1.4 主要溶液的配制 | 第22-23页 |
| 1.2 实验方法 | 第23-29页 |
| 1.2.1 研究对象 | 第23-24页 |
| 1.2.2 ICA含药血清的制备 | 第24页 |
| 1.2.3 PBMC的分离、提取 | 第24-26页 |
| 1.2.4 PBMC的分组、培养 | 第26页 |
| 1.2.5 ELISA测定培养上清液中的细胞因子IL-4、IL-17 的含量 | 第26页 |
| 1.2.6 实时荧光定量 PCR（Real-time Quantitative PCR，RQ-PCR）检测 PBMC 中GR、ERα、ERβ基因的表达 | 第26-29页 |
| 1.2.7 统计学处理 | 第29页 |
| 2 研究结果 | 第29-55页 |
| 2.1 入组研究对象的基本情况比较 | 第29页 |
| 2.2 Ficoll-Paque 密度梯度法 PBMC 分离效果 | 第29-31页 |
| 2.3 培养 48h后PBMC的生长情况 | 第31页 |
| 2.4 培养 72h后PBMC的生长情况 | 第31-32页 |
| 2.5 ELISA检测培养上清液中的细胞因子IL-4 水平 | 第32-39页 |
| 2.5.1 IL-4 细胞因子标准曲线 | 第32-33页 |
| 2.5.2 MS患者各组培养上清液IL-4 的浓度水平 | 第33-34页 |
| 2.5.3 健康人各组培养上清液IL-4 的浓度水平 | 第34-36页 |
| 2.5.4 MS患者ICA组与各自对照组IL-4 浓度差值比较 | 第36-37页 |
| 2.5.5 MS患者与健康人的ICA组与各自对照组IL-4 浓度差值比较 ..22 | 第37-39页 |
| 2.6 ELISA检测培养上清液中的细胞因子IL-17 水平 | 第39-46页 |
| 2.6.1 IL-17 细胞因子标准曲线 | 第39-40页 |
| 2.6.2 MS患者各组培养上清液IL-17 的浓度水平 | 第40-41页 |
| 2.6.3 健康人各组培养上清液IL-17 的浓度水平 | 第41-43页 |
| 2.6.4 MS 患者 ICA 组与各自对照组 IL-17 浓度差值比较 | 第43-44页 |
| 2.6.5 MS患者与健康人的ICA组与各自对照组IL-17 浓度差值比较 .29 | 第44-46页 |
| 2.7 RQ-PCR检测PBMC中的GR、ERα、ERβ基因表达水平 | 第46-55页 |
| 2.7.1 PBMC总RNA电泳鉴定结果 | 第46页 |
| 2.7.2 PCR产物特异性分析 | 第46-49页 |
| 2.7.3 各组PBMC GR mRNA表达水平 | 第49-51页 |
| 2.7.4 各组PBMC ERα mRNA表达水平 | 第51-53页 |
| 2.7.5 各组PBMC ERβ mRNA表达水平 | 第53-55页 |
| 3 讨论 | 第55-62页 |
| 3.1 ICA的血清药理学基础 | 第55-56页 |
| 3.2 ICA对PBMC培养上清液中细胞因子IL-4、IL-17 的影响 | 第56-58页 |
| 3.2.1 ICA对MS患者Th1/Th2 平衡有干预作用 | 第56-57页 |
| 3.2.2 ICA对MS患者PBMC培养上清液中IL-17 的影响 | 第57-58页 |
| 3.3 ICA对MS患者PBMC GR mRNA表达的影响 | 第58-60页 |
| 3.4 ICA对MS患者PBMC ER mRNA表达的影响 | 第60-61页 |
| 3.5 小结 | 第61页 |
| 3.6 本研究的创新性及意义 | 第61-62页 |
| 3.7 不足及展望 | 第62页 |
| 4 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-68页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第68-69页 |
| 附录 | 第69-83页 |
| 1.中英文缩略表 | 第69-70页 |
| 2.EDSS评分法 | 第70-72页 |
| 3.多发性硬化 Mc Donald 诊断标准（2010 年修订） | 第72-74页 |
| 4.文献综述 | 第74-83页 |
| 参考文献 | 第79-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
