中文摘要 | 第1-10页 |
英文摘要 | 第10-13页 |
缩略词表 | 第13-15页 |
前言 | 第15-17页 |
第一部分 淫羊藿素诱导肝星状细胞生长抑制和凋亡实验 | 第17-28页 |
一、材料与方法 | 第17-20页 |
(一) 实验材料 | 第17-18页 |
1、主要化学药品和生物试剂 | 第17页 |
2、细胞系 | 第17页 |
3、主要溶剂的配制 | 第17-18页 |
4、主要实验仪器 | 第18页 |
(二) 实验方法 | 第18-20页 |
1、细胞培养 | 第18页 |
2、细胞处理 | 第18页 |
3、噻唑蓝(MTT)细胞活力测定 | 第18-19页 |
4、流式细胞仪检测细胞周期 | 第19页 |
5、Annexin-V-FITC凋亡试剂盒检测细胞凋亡情况 | 第19页 |
6、统计学处理 | 第19-20页 |
二、结果 | 第20-25页 |
(一) 淫羊藿素对体外培养的HSCs形态的影响 | 第20页 |
(二) 活化型HSCs对淫羊藿素反应敏感 | 第20-22页 |
(三) 淫羊藿素对HSCs生长的影响 | 第22-23页 |
(四) 淫羊藿素诱导活化型HSCs凋亡 | 第23-25页 |
三、讨论 | 第25-28页 |
(一) HSCs在肝纤维化发生和逆转中的作用 | 第25-26页 |
(二) 淫羊藿素诱导体外培养的HSCs凋亡 | 第26-27页 |
(三) 诱导活化型HSCs凋亡的中草药 | 第27-28页 |
第二部分 淫羊藿素诱导肝星状细胞凋亡的分子机制探讨 | 第28-38页 |
一、材料与方法 | 第28-33页 |
(一) 实验材料 | 第28-29页 |
1、主要化学药品和生物试剂 | 第28页 |
2、细胞分组 | 第28-29页 |
3、主要溶液的配制 | 第29页 |
4、主要实验仪器 | 第29页 |
(二) 实验方法 | 第29-33页 |
1、mRNA抽提及质量检测方法 | 第29页 |
2、Agilent全基因组表达谱芯片杂交 | 第29-30页 |
3、目标基因引物设计与合成 | 第30页 |
4、Real-time PCR操作 | 第30-31页 |
5、Western blot分析 | 第31-33页 |
6、统计学处理 | 第33页 |
二、结果 | 第33-35页 |
(一) Agilent基因芯片比对结果 | 第33-34页 |
(二) 淫羊藿素对HSCs中Bcl-2蛋白家族相关基因表达的影响 | 第34页 |
(三) 淫羊藿素对HSCs中Caspases蛋白表达的影响 | 第34-35页 |
三、讨论 | 第35-38页 |
(一) 活化型HSCs凋亡相关通路研究进展 | 第36-37页 |
(二) 淫羊藿素通过调控Bcl-2家族蛋白表达诱导HSCs凋亡 | 第37-38页 |
第三部分 淫羊藿素治疗大鼠肝纤维化的实验研究 | 第38-50页 |
一、材料与方法 | 第38-42页 |
(一) 实验材料 | 第38-39页 |
1、主要化学药品和生物试剂 | 第38页 |
2、实验动物 | 第38页 |
3、主要溶液的配制 | 第38-39页 |
4、主要实验仪器 | 第39页 |
(二) 实验方法 | 第39-42页 |
1、胆汁淤积性肝纤维化模型的建立及分组 | 第39-40页 |
2、CCl_4诱导大鼠肝纤维化模型的建立及分组 | 第40页 |
3、血清学指标的测定方法 | 第40页 |
4、肝组织病理学检测方法 | 第40-41页 |
5、肝组织羟脯氨酸含量测定方法 | 第41页 |
6、肝组织蛋白提取及Western blot分析 | 第41页 |
7、统计学处理 | 第41-42页 |
二、结果 | 第42-48页 |
(一) 各组动物一般情况 | 第42页 |
(二) 淫羊藿素对各组肝纤维化大鼠肝功能的影响 | 第42-43页 |
(三) 各组肝纤维化大鼠肝脏病理组织改变情况分析 | 第43-45页 |
1、淫羊藿素对胆汁淤积性肝纤维化病理过程的影响 | 第43-44页 |
2、淫羊藿素对CCl_4诱导肝纤维化病理过程的影响 | 第44-45页 |
(四) 淫羊藿素对大鼠肝组织中活化型HSCs分布的影响 | 第45-46页 |
(五) 淫羊藿素对肝组织羟脯氨酸含量及Ⅰ型胶原表达的影响 | 第46-48页 |
三、讨论 | 第48-50页 |
全文小结 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-56页 |
综述 活化型肝星状细胞清除机制及其相关抗肝纤维化策略 | 第56-63页 |
在读期间发表论文和参加科研工作情况 | 第63-64页 |
致谢 | 第64页 |